Дезинфекция. Медицинские отходы

Лекция
Тема: «Дезинфекция. Медицинские отходы»
Дезинфекция – уничтожение (уменьшение) количества патогенных и
условно – патогенных микроорганизмов в окружающей среде (кроме
бактериальных спор) на объектах оборудования и изделиях медицинского
назначения в ЛПУ.
Дезинсекция – это раздел эпидемиологии, изучающий и разрабатывающий
средства и способы уничтожения возбудителей заразных болезней их
переносчиков (клопы, вши).
От лат. «des» – уничтожение, «infectio» - инфекция; «des» – уничтожение,
«insectum» - насекомое; Дератизация – комплекс мероприятий,
направленных на борьбу с грызунами, опасными в эпидемическом
отношении (от фран. «de-ratisation» - от rat – крыса).
Дератизация – это комплекс мероприятий, направленных на борьбу с
грызунами, опасными в эпидемическом отношении.
Дезинфекция – это удаление, уничтожение возбудителей заразных болезней
в окружающей среде.
Методы дезинфекции:
1. Механический. Можно отнести: стирку белья, мытье рук, потряхивание,
удаление пыли, влажная уборка, пылесос. При этом достигается только
частичное удаление возбудителей инфекции.
2. Физический. Использование физических свойств в окружающей среде.
Это использование холода и высокой температуры. Можно отнести:
кипячение, обжигание, прижигание, сжигание, применение утюга.
3. Химический. Это метод использования различных химических свойств.
В настоящее время используют различные средства для дезинфекции:
К дезинфектантам предъявляются особые требования: (хлорсодержащие
препараты):
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
4.
Растворимость в воде.
Эффективность в небольшом количестве.
Широкий спектр действия на возбудителя.
Отсутствие отрицательного воздействия на обработанный предмет.
Малая токсичность для человека.
Отсутствие неприятного стойкого запаха.
Устойчивость при хранении (простота в употреблении).
Комбинированный – это сочетание 2-х и более методов одновременно.
Различают 2 вида дезинфекции:
1. Профилактическая.
2. Дезинфекция в эпидемическом очаге, которая делится в свою очередь на
текущую и заключительную.
1. Профилактическая дезинфекция – проводится независимо от наличия
инфекционного заболевания. Проводится с целью предупреждения
накопления и распространения возбудителей болезней в окружающей
среде.
Проводят в местах постоянного скопления большого количества людей.
Так же проводится обеззараживание питьевой воды (хлорирование,
пастерилизация молока).
2. а) Текущая дезинфекция - проводится в стационаре или на дому, в
присутствии больного и производят все время. И при пребывании
больного в стационар.
б) Заключительная дезинфекция - проводится однократно. После выписки
больного из стационара или смерти больного.
Стерилизация – это полное освобождение от микроорганизмов путем
воздействия на них физических и химических методов.
В медицине стерилизуют все изделия, аппараты, инструменты, материалы,
соприкасающиеся: с поверхностью раны, с кровью, инструменты для
парентеральных (во внутрь) введений.
Методы и средства стерилизации должны обеспечивать гибель всех, в том
числе высоко устойчивых спороносных микроорганизмов как патогенных,
так и не патогенных.
Существуют химические и физические методы стерилизации:
К физическим относятся:
1. Паровой метод стерилизации, агентом служит насыщенный пар под
большим давлением, производиться в автоклавах.
Под давлением 2-х атмосфер при температуре 132 градуса выдержка
инструментов 20 мин.
Под давлением 1-ой атмосферы при температуре 120 градусов выдержка
инструментов 40 мин.
2.Воздушный метод стерилизации используется сухой, горячий воздух в
сухожаровых шкафах.
При температуре 180 гр. – 1 час.
При температуре 160 гр. – 2.5 час.
3. Фильтрование сывороток вакцин с кровяных плазм.
4. Использование инфракрасного облучения.
5. Радиация гамма лучами (4 и 5 метод используется на заводах).
3. Газовый метод – используют окись этилена и фармальдегида.
В специальных камерах выдержка зависит от вида инструментов и
концентрации опыления от 30 мин. до 7 часов.
4.Термический метод (воздействие высокой температуры).
В крупных больницах организована централизованная стерилизация.
ЦСО (централизованное стерилизационное отделение) – это
специальная служба стерилизации материала от перевязочных средств до
медикаментов и оборудования.
ОСТ – 42-21-285
Обработка, дезинфекция и стерилизация инструментов
медицинского назначения и многоразовых инструментов.
Приказ издан в 1989 году.
Имеет 3 этапа:
При наличии остатков крови смывают водой (1 литр + 200 гр.сухой
хлорной извести)
1 этап – Это дезинфекция. Все инструменты после использования
подвергаются к дезинфекции.
6% перекись водорода на 30 минут.
2 этап – Предстерилизационная очистка. Это освобождение от
механических загрязнений, от остатков крови, лекарственных препаратов
и от дезинфицирующих средств.
Действия:
1. Замачивание в моющем растворе на 15 мин. Чтобы получить 1 литр
моющего раствора нужно приготовить (5 грамм порошка+160 мл 3%
перекиси водорода + 835 мл воды) 50-55 градусов.
2. Мытье каждого изделия отдельно с применением щеточек и марлевых
тампонов.
3. Ополаскивание в 2-х емкостях, дистиллированной воде.
4. Проверка качества очистки
А) От остатков моющего средства
Б) От остатков крови – азопирамовая проба и фенолфталеиновая проба.
5. Сушка и упаковка в бикс.
3 этап – Стерилизация.
По приказу ОСТ – 42 применяется 4 метода:
1. Паровой (под давлением 2-х атмосфер автоклав темпер.132 гр.
Выдержка 20 мин.)
2. Воздушный (сухожаровой шкаф темпер. 180 гр. - 60 минут.)
3. Химический (6% перекись водорода , 1% дезоксон)
4. Газовый (фармальдегид) камера.
Проверку стерильности проводят индикаторами стерильности –
термоиндикаторы.
Стерильность в упакованном виде в стерильных столах или биксах
сохраняется в течение 3-х суток.
Постоянная опасность инфицирования пациента и медицинского
персонала посредством контаминированного инструментария, материала и
т.д. требует надежной защиты и эффективной дезинфекции. Так как
внутрибольничные инфекции (ВБИ) представляют серьезную угрозу для
здоровья, жизни пациентов и медицинских работников, входящих в группу
риска.
Главную роль в борьбе с ВБИ играет правильная организация
профилактических противоэпидемических мероприятий.
1.Для защиты персонала согласно «Правилам по охране труда
работников дезинфекционного дела», необходимо организовать «Аптечку
первой помощи для работающих с дезинфекционными средствами».
2.Соответственно действующему приказу МЗ СССР № 720 от
31.07.1978 г. и его приложениям в отделениях хирургического профиля
постельные принадлежности всех выписанных пациентов должны пройти
обработку в дезинфекционных камерах.
В терапевтических отделениях такой обработке подлежат постельные
принадлежности умерших и инфекционных больных. В настоящее время для
дезинфекции предметов медицинского назначения используют моющеедезинфицирующие машины.
3. Тележки, на которых доставляют в дезинфекционный блок
постельные принадлежности, обязательно обрабатывают дезинфицирующим
раствором, как и стеллажи, стены и пол в «грязной» зоне.
После окончания дезинфекции, «грязную» зону необходимо вымыть
(из шланга). В настоящее время используют электрохимактивированный
раствор гипохлорида натрия.
После окончания работы сотрудники, работающие в «грязной» зоне,
должны принять гигиенический душ и сменить спецодежду.
Необходимо более детально разобрать понятия «деконтаминация»,
«дезинфекция», «предстерилизационная очистка», «стерилизация».
Деконтаминация
–
процесс
удаления
или
уничтожения
микроорганизмов с целью обезвреживания и защиты. Включает чистку,
дезинфекцию, стерилизацию.
Чистка – процесс, в результате которого инородные тела удаляются с
поверхности объектов.
Стерилизация – уничтожение на любых объектах микроорганизмов
всех видов на всех стадиях развития.
Виды дезинфекции
1. Физическая – предусматривает действие:
- высоких температур (кипячение, сжигание, прокалывание);
- низких температур;
- механические приемы – влажная уборка, обмывание, выпаривание,
проветривание, вентиляция, стирка с использованием мыла и т.д;
- лучистой энергии.
При механических приемах происходит значительное снижение
микробной обсемененности на объектах внешней среды, поэтому
целесообразно их использовать при проведении профилактической
дезинфекции.
 При паровом методе дезинфекции при избыточном давлении 1,5 атм
температура 110 °С -20 мин.
 При воздушном методе дезинфекции температура 120 °С – 45 мин.(для
термостойких изделий).
2. Химическая – предусматривает действие химических препаратов (кислот,
щелочей,фенола, хлорсодержащих препаратов, поверхностно-активных
веществ и т.д.). Погружение в дезинфицирующий раствор.
 3 % раствор хлорамина – 60 мин; при туберкулезе – 5 % раствор
хлорамина – 240 мин;
 6 % раствор перекиси водорода – 60 мин или 4 % раствор – 90 мин;
 Раствор пресепта 0,056 % - 90 мин (10 таблеток по 0,5 г), лизетол 5 % - 15
мин (50 мл лизетола + 960 мл воды);
 Виркон 1 % - 10 мин; 10 г на 960 мл воды; 50 г ( 1 пакетик ) на 5 л воды;
 Спирт 70 % ( только аптечного приготовления) – 30 мин. Химические
препараты могут быть использованы в виде водных растворов, эмульсий,
суспензий, порошков, аэрозолей, полимерных покрытий и т.д.;
 Орошение;
 Протирание;
 Замачивание;
 Засыпание сухим препаратом.
При гнойно – септической и кишечной инфекции дезинфекция является
единственным способом, снижающим риск возникновения ВБИ.
3. Биологическая – предусматривает:
 Антогонистическое действие между различными микроорганизмами;
 Действие средств биологической природы (обеззараживание сточных
вод на полях фильтрации и т.д.).
4. Комбинированная – предусматривает использование перечисленных
выше методов в различных сочетаниях.
Наличие органических материалов (кровь, сыворотка, фекальный
материал) снижает эффективность метода.
Сильно загрязненный микроорганизмами материал требует большего
времени дезинфекции. Таким образом, становится понятной важность
скрупулезность очистки.





Факторы, влияющие на обеззараживающий эффект
дезинфицирующих средств:
Концентрация дезинфицирующего раствора (химического препарата);
Способность химического препарата растворяться в воде;
Наличие активнодействующего вещества;
Влажность, температура, давление, кислотность;
Устойчивость биологического возбудителя к дезсредствам;
 Биологическая активность микроорганизмов к различным средствам
дезинфекции.







Для обрабатываемого объекта важны:
Интенсивность микробного обсеменения;
Особенности формы, объем обрабатываемого объекта;
Способы обработки (орошение, мытье, протирание, погружение);
Соответствующая экспозиция (время воздействия препаратов);
Обеспечение контакта между химическим препаратом и микробной
клеткой;
Наличие органических загрязнений.
На эффективность дезинфекции влияют все перечисленные факторы.
Каждый из них может уменьшить и даже свести на нет активность
процесса обеззараживания.
Приготовление рабочих растворов хлорной извести
Хлорамин содержит 25 % активного хлора. Как правило, используется
для мягкой дезинфекции ( столы, тумбочки, подоконники, посуда, раковины).
Готовят непосредственно перед употреблением. По приказу № 720,
может быть использован для дезинфекции рук. Рабочие растворы хлорамина
готовят из расчета:
- 10 г сухого вещества на 1 л воды – 1 % раствор хлорамина;
- 30 г сухого вещества на 1 л воды – 3 % раствор хлорамина;
- 50 г сухого вещества на 1 л воды – 5 % раствор хлорамина;
Годность раствора 15 дней, активность хлора должна быть не менее 25 %.
При приготовлении рабочих растворов хлорамина, хлорамин не заливать
водой, а засыпать его в небольшое количество горячей воды, минимальная
температура – не ниже 27 °С, тщательно размешивать, затем доливать водой
до необходимого количества.
0,5 – 1 % растворы хлорамина используются там, где не может быть
крови;
3% раствор хлорамина – там где, может быть присутствие крови (приказы
№ 408,128);
5% раствор хлорамина – при туберкулезе, микроспории,в ЦСО,
операционных блоках.
В настоящее время много уже готовых растворов дезинфицирующих
средств, но и растворы хлорной извести и хлорамина активно используют.
Дезинфекция инструментов и других предметов медицинского
назначения в домашних условиях и в ЛПУ
Необходимо обратить внимание на то, что в домашних условиях часто
используют содовый раствор. Важно знать, как приготовить этот раствор.
2% раствор соды:
2 г (1\2 ч.л.) – 100 мл воды;
20 г – 1000 мл
200 г – 10 000 мл
5% раствор соды:
5 г ( 1ч.л.) – 100 мл
50 г – 1000 мл
500 г – 10 000 мл
Дезинфекция инструментов и предметов медицинского назначения
проводится в лечебных отделениях для защиты медперсонала, так как это
обеспечивает инфекционную безопасность медсестры.
После этапа дезинфекции обязательно промывание под проточной
водой.
1–й этап – замачивание использованных шприцев, игловых
инструментов и других предметов медицинского назначения в
дезинфицирующем растворе на время, указанное в методических
рекомендациях по использованию конкретного дезинфицирующего средства,
затем замачиваемый предмет, инструмент необходимо промыть под
проточной водой и провести контроль качества дезинфекции (на наличие
остатков дезинфицирующего средства).
2-й этап – предстерилизационная очистка (замачивание и мытье в
моющем растворе) с последующим промыванием под проточной водой и
проведение контроля качества предстерилизационной очистки, промывание
дистиллированной водой.
3-й этап – сушка, упаковка.
4-й этап – стерилизация.
Предстерилизационная очистка
- предусматривает удаление с изделий медицинского назначения
белковых, жировых, механических загрязнений, остатков лекарственных
препаратов, в том числе невидимых для глаза остатков крови, слизи и т.д.
Это действие в дальнейшем обеспечивает эффективность стерилизации.
Предстерилизационная
очистка
может
проводится
ручным
или
механизированным способом с применением моющих растворов.
Предстерилизационная очистка может быть:
 Централизованной;
 Децентрализованной;
 Механизированной;
 Ручной.
Ручной способ предстерилизационной очистки осуществляется с
помощью ершей, ватно-марлевых тампонов, механизированный –
специальным оборудованием с ершеванием или применением ультразвука.
Предстерилизационной обработке должны подвергаться все изделия
после использования перед их стерилизацией с целью удаления белковых,
жировых и механических загрязнений.
Рекомендуется проводить предстерилизационную очистку в 2 этапа:
1-й – первичная обработка изделий в клинических отделениях
(удаление загрязнений после обеззараживания щетками или ватно –
марлевыми тампонами).
2-й – проводится в ЦСО до полного удаления с поверхности изделий
белковых,
жировых,
лекарственных,
пирогенных
веществ
и
микроорганизмов.
Контроль качества предстерилизационной очистки
Контролю качества предстерилизационной очистки подвергают не
менее 1% одновременно обработанных изделий одного наименования, но не
менее 3-5 единиц.
Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем
постановки проб на наличие:
 Следов хлора или других дезинфицирующих средств;
 Крови – азопирамовой, амдопириновой;
 Остаточных
щелочных
компонентов
моющего
средства
–
фенолфталеиновой;
 Жировых белковых остатков – судан-3;
С введением «Методических рекомендаций по контролю качества
предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с
помощью реактива азопирама» была отменена бензидиновая проба.
Заключительным этапом предстерилизационной очистки изделий
медицинского назначения является контроль качества отмывки от кровяных,
белковых, жировых и прочих загрязнений с помощью специальных
реактивов.
Контроль могут проводить на рабочих местах медсестры
(самоконтроль), а также старшая медсестра и заведующий центральным
стерилизационным отделением.
Азопирамовая проба
Азопирам хранят в плотно закрытом флаконе при температуре 4°С в
холодильнике в течение 2 мес. в темном месте при комнатной температуре –
не более 1 мес. Умеренное потемнение реактива без выпадения осадка не
снижает его качества.
Пригодность рабочего раствора азопирама медсестра проверяет
следующим образом. Наносят 2-3 капли раствора на участок крови:
 Если не позже чем через 1 мин появится фиолетовое окрашивание, быстро
(в течение нескольких секунд) переходящее в розово – сиреневое или
буроватое, реактив годен к использованию;
 Если окрашивание в течение 1 мин не появится, реактивом пользоваться
нельзя.
Азопирам выявляет также наличие хлорамина, хлорной извести,
стирального порошка с отбеливателем, ржавчины.
Реактив готовят непосредственно перед проведением пробы на
качество предстерилизационной очистки.
Проведение пробы
На инструмент наносят 2-3 капли раствора реактива или протирают
тампоном, смоченным в растворе реактива: азопирама, амидопирина,
фенолфталеина, судана – 3.
При наличии крови проводят пробу с амидопирином и азопирамом, при
этом происходит окрашивание:
 С азопирамом – в течение 1 мин появляется фиолетовое, затем розово –
синее или буроватое окрашивание продолжается более 1 мин, то реакция
не учитывается; буроватое окрашивание возникает при наличии ржавчины
и хлорсодержащих окислителей, в остальных случаях окрашивание розово
– синее; с амидопирином – сине – зеленое (положительная реакция).
 С фенолфталеином: 1 – 2 капли 1% спиртового раствора наносят на
изделия, при наличии остатков моющего средства возникает розовое
окрашивание;
 С суданом – 3 наличие желтых пятен, подтеков говорит о присутствии
жировых наслоений; в шприц вносят 3 – 5 мл раствора, смачивают всю
поверхность в течение 10 с, краску смывают обильной струей воды.
Для контроля труднодоступных мест применяет ватные турунды,
смоченные в реактиве.
Для проверки шприца в него наливают реактив и несколько раз
продвигают поршень, смачивая стенки, затем вытесняют реактив на
марлевую салфетку или вату.
Для проверки игл в шприц наливают реактив, не давший
положительной пробы, последовательно сменяя иглы, пропускают реактив
через них, вытесняя по 3 – 4 капли на марлевую салфетку.
Для проверки катетеров и других полых изделий в них вводят реактив
пипеткой (чистым шприцем), после непродолжительного контакта реактива
его сливают на марлевую салфетку.
Самоконтроль предстерилизационной очистки изделий в лечебно –
профилактических учреждениях должен проводиться ежедневно. Результаты
контроля отражают в журнале ф. 257\у.
При положительных пробах всю группу проверяемых изделий, из
которых отбирали инструмент на контроль, подвергают повторной обработке
до
получения
отрицательных
результатов
(при
азопирамовой,
амидопирамовой, судановой пробах – предстерилизационная очистка, при
фенолфталеиновой - отмывка водой).
Стерилизация
Стерилизация - уничтожение на любых объектах микроорганизмов
всех видов на всех стадиях развития.
Стерилизацию проводят после дезинфекции предстерилизационной
очистки.
Стерилизации должны подвергаться все предметы, соприкасающиеся с
раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными
препаратами, а также отдельные виды диагностической аппаратуры, которые
в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистыми оболочками и могут
вызвать их повреждения.
Стерилизацию выполняют за счет действия пара под давлением
(паровая стерилизация), сухого жара, низкотемпературного пара,
формальдегида или этилен – оксида, который используется в основном в
промышленности.
Методы стерилизации
 Холодные (химический, радиационный);
 Термические (паровой, воздушный).
Стерилизации должны подвергаться все предметы, соприкасающиеся с
раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными
препаратами, а также отдельные виды диагностической аппаратуры, которые
в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистыми оболочками и могут
вызвать их повреждения.(ОСТ 42-21-2-85)
Даже при нехватке времени и ресурсов каждому пациенту должно быть
гарантировано использование стерильных инструментов и материалов.
Холодные методы стерилизации
При химическом методе используют газ и химические растворы.
Газовый метод. Газ обладает стерилизующим действием при
нормальной температуре. Сроки хранения инструментария, материала при
данном методе:
Могут быть использованы средства:
а) окись этилена с бромистым этилом (он нужен, чтобы этилен не
взорвался).
Упаковки: двухслоцный полиэтилен – 5 лет
Мешочная бумага – 20 сут.
Используют для стерилизации оптики, кардиостимуляторов,
полимерных материалов (резина, пластмасса, стекло, металл).
Время экспозиции – 6 ч. Температура в камере – 35 °С.
б) пары 40% раствора формальдегида в этиловом спирте, температура
80°С (доза формальдегида 150 мл на 1 л. должен распыляться!).
Продолжительность обработки:
- пластмассы и резины – 180 мин;
- стекла и металла – 120 мин.
Газовый метод стерилизации применяют для эндоскопических
инструментов, аппаратов искусственного кровообращения, изделий из
пластмасс и кетгута.
Упаковки: двухслойный полиэтилен – 5 лет. В бумажных упаковках,
кроме пергамента, срок хранения составляет:
- заклеенные – 20 сут;
- закрытые скрепкой – 3 сут.
Используют для стерилизации изделий из резины, полимеров, металла,
стекла.
Радиационнвй метод чаще применяют в промышленном
производстве, для стерилизации инструментов группы «С» и других изделий
медицинского назначения одноразового использования (изделия из
термолабильных материалов).
Упаковки – бумага, полиэтилен.
В этих упаковках стерильность может быть сохранена не один год, тем
не менее она также ограничена. На упаковках указывают дату, год
стерилизации, а под ними – дату и год стерилизации.
Термические методы стерилизации
1. Паровой метод стерилизации. До последнего времени трудно было
переоценить важность паровой стерилизации, так как бактерицидность
увлажненного воздуха повышается.
Автоклавы называются медицинским паровым стерилизатором (ГОСТ
№ 19569-89 с 1990 г.).
В паровом стерилизаторе стерилизующим фактором является
насыщенный пар, т.е. пар, находящийся в равновесии с жидкостью, из
которой он образовался.
Температура насыщения водными парами может быть выше
температуры кипящей воды и находится в прямой зависимости от
избыточного давления.
АТИ – атмосфера избыточная. Стерилизация достигается при условии,
что при определенном давлении в стерильном аппарате может быть только
определенная температура;
0,5 АТИ – 110 °С;
1 АТИ – 119.6 °С;
1,1 АТИ – 120 °С;
1,5 АТИ – 126,8 °С;
2 АТИ – 132,9 °С;
2,2 АТИ – 132 °С;
В настоящее время используется паровые стерилизаторы с
уменьшением времени стерилизации и повышением температурных
режимов;
141 °С – 3 мин;
134 °С – 5 мин;
126 °С – 10 мин.
Режимы стерилизации для инструментов и перевязочного
материала;
2 АТИ – 132,9 °С – 20 мин (стекло, металл, текстиль);
1,1 АТИ – 120 °С – 45 мин (изделия из резины, в том числе перчатки, и
полимерных материалов);
0.5 АТИ – 110 °С – 180 мин.
По эффективности все методы одинаковы. Однако паровая
стерилизация зависит от правильного выбора упаковки, соблюдения правил
загрузки ит.д.
Упаковки для паровых стерилизаторов
1. Биксы простые (металлические стерилизационные коробки). В последнее
время главным образом используются для стерилизации операционного
белья.
2. Биксы с бактериальными фильтрами (все перфорированные места бикса
на дне и крышке плотно закрыты двухслойной бязью или другими
спецтканями).
3. Бумага прочная и влагопрочная (крефт – бумага) может быть
использовано дважды.
4. Бумага двухслойная крепированная (по цвету может быть зеленая, синяя),
может быть использовано дважды.
5. Пергамент.
6. Двухслойная бязь, может быть использовано любая хлопковая ткань,
кроме марли.
При использовании бумаги, если это не пакет, инструмент заворачивают
так, чтобы обязательно было два слоя.
Сроки сохранения стерильности инструментов, материалов после
паровой стерилизации в упаковках зависит от вида упаковки:
 Бикс (простой) – 2 сут





Бикс (с бактериальным фильтром) – 20 сут;
Крафт – пакет, заклеенный с 4-х сторон – 20 сут;
Крафт – пакет с двумя скрепками – 3 сут;
Комбинированные прозрачные пакеты – 1 год;
Бязевые упаковки – 3 сут.
Важно отметить, что перед стерилизацией все упаковки помещают в
брезентовый мешок, имеющий четкую маркировку. В этой защитной
упаковке изделия стерилизуются, остывают в стерильной зоне после
выгрузки, затем их доставляют в клинические отделения, кабинеты и т.д.
Транспортировку осуществляют либо в закрытых тележках – контейнерах,
либо на открытых каталках, при этой каждый ярус каталки должен быть
закрыт стерильной простыней, а сверху стерильным чехлом из брезента или
фильтродиагоналевой ткани. Это помогает избежать повторного
инфицирования стерильных изделий.
В каждую упаковку, которая должна быть заполнена на 70 %
материалом, помещают термовременный индикатор контроля стерилизации
«Винар», «Стерикинг» и др.
В настоящее время существуют 6 классов термовременных
индикаторов стерильности.
В каждом стерилизационном отделении могут быть различные виды
термовременных индикаторов стерильности. Это зависит от экономического
состояния лечебно – профилактического учреждения. Бумажный пакет с
использованием скрепок подворачивают два раза, а для склеивания один раз.
Один бумажный пакет можно использовать до 2 раз. На маркировке
бумажного пакета, бикса должны быть:
 Штамп с фамилией парамедика, проводившего стерилизацию
 Дата стерилизации и сроки использования (реализации).
К сожалению, эти пакеты используются до настоящего времени, хотя
уже давно рекомендованы импортные упаковки, имеющие индикаторную
цветную полоску для контроля стерилизации.
Стерильный инструментарий, материалы, оборудование должны быть
защищены от реконтаминации (повторное инфицирование).
Термолабильные материалы (перчатки, пластик, резина) стерилизует в
любой
упаковке, с выбором режима стерилизации для термолабильных изделий.
Можно использовать перфорированные лотки (для двойной бязовой
упаковки).
Подготовка перчаток к стерилизации.
Латексные перчатки перед стерилизацией необходимо:
1. После замачивания в дезинфицирующем растворе промыть под проточной
водой;
- замочить в моющем растворе на 15 мин при постоянной
температуре 40-50 °С;
- вымыть в этом растворе и еще раз промыть под проточной водой;
2. Высушить, провести контроль предстерилизацмонной очистки;
3. Проверить на герметичность, внутри и снаружи пересыпать тальком ,
сложить попарно;
4. Каждую пару перчаток завернуть отдельно в марлю таким образом, чтобы
между ними была прослойка упаковки, и в таком виде поместить в
упаковки для стерилизации;
5. Заложить в бикс, прикрепить индикатор контроля стерилизации, закрыть
решетчатые окошки бикса, промаркировать бикс и отправить его для
стерилизации в ЦСО.
Несмотря на то что процесс стерилизации перчаток занимает много
времени,
дорогостоящ, тем не менее многие лечебно – профилактические учреждения
продолжают использовать многоразовые резиновые перчатки, хотя
использование одноразовых перчаток значительно экономичнее.
Перчатки, находящиеся в стерилизационных коробках (биксах),
стерилизуют в паровом стерилизаторе под давлением 1.1 атм 120 °С в
течение 45 мин, предварительно открыв решетчатые окошки бикса.
Перчатки необходимо менять даже в процессе выполнения 1
манипуляции если они повреждены, так как возможно инфицирование кожи
медсестры кровью или другими биологическими жидкостями пациента, а
находящийся пот в перчатках может инфицировать пациента!
В тех же районах, где новые перчатки не всегда имеются в
наличии, латексные перчатки после обеззараживания моют с мылом,
высушивают, обрабатывают спиртом и используют повторно. Это
недопустимо!
Парамедики обязаны помнить, что при заполнении стерилизационных
аппаратов необходимо соблюдать определенные правила;
- на верхние полки укладывают материал;
- на нижние полки – инструментарий;
После стерилизации биксы необходимо взвешивать для контроля
откачивания пара из паровых стерилизаторов.
Хирургическое белье, перевязочный материал, хирургические
инструменты, резиновые перчатки стерилизуют в стандартных биксах,
закладывают их рыхло для свободного поступления пара.
В паровых стерилизаторах стерилизую также детали приборов,
аппаратов, изготовленных из коррозионно – стойких металлов и сплавов;
шприцы многоразового использования с надписью «200 °С», стеклянную
посуду, изделия из резины (катетеры, зонды, газоотводные трубки и т.д.).
Недостатки метода
Возникает коррозия инструментов из коррозионно – нестойких
металлов, так как
пар при охлаждении превращается в конденсат, который увлажняет
прошедшие стерилизацию инструменты и другие изделия медицинского
назначения.
Воздушный метод стерилизации (использование сухого жара)
При данном методе стерилизации не происходит увлажнения упаковки,
изделий,
что дает возможность сохранить сроки стерильности изделий и избежать
коррозии металла.
Эффективность воздушной стерилизации зависит от равномерного
распределения горячего воздуха в стерилизационной камере.
Большие предметы необходимо класть на верхнюю металлическую решетку,
чтобы они не препятствовали потоку горячего воздуха.
Стерилизуемые изделия необходимо укладывать горизонтально,
поперечно, равномерно их распределяя. Инструменты, изделия из стекла
укладывают только в один слой и не касаясь друг друга. Термовременный
индикатор контроля стерильности укладывают на перфорированный лоток, и
стерилизатор герметично закрывают. По окончании стерилизации
осуществляют выемку стерильных предметов вместе с лотком. О качестве
стерилизации судят по изменению цвета термовременного индикатора.
При стерилизации емкости с крышкой последняя кладется рядом, при выемке
из стерилизатора емкость накрывается ею, и материал или инструмент,
которые находятся в емкости, могут использоваться в течении смены.
Стерилизаторы последних лет выпуска обладают многими
достоинствами, они имеют очень важные параметры, позволяющие более
эффективно проводить стерилизацию, в том числе:
 Аварийную сигнализацию;
 Блокировку дверей;
 Индикацию процесса и параметров режима стерилизации (таймер),
который должна быть электронной;
 Механизированное или автоматизированное закрытие дверей при объеме
более 100 л.
При отключении электроэнергии автоматически происходит сброс
температуры стерилизации и цикл стерилизации начинают заново.
Этой стерилизации подвергаются:
- стекло;
- металлические изделия;
- силиконовые изделия.
На новых типах аппаратов, которые отвечают этим требованиям,
стерилизация проводится при:
200 ± 3 °С – 30 мин;
180 ± 3 °С – 40 мин;
160 ± 3 ° С – 120 мин.
На старых типах аппаратов:
180 ± 2 °С – 60 мин;
160 ± 2 °С – 150 мин.
Сроки использования инструментария (материала) после воздушной
стерилизации – непосредственно после нее (если он стерилизовался
открытом виде), при хранении в асептических условиях без упаковки – 6
часов.
Методы контроля стерилизации могут быть:
 Оперативными;
 Долгосрочными;
Оперативные методы контроля – те , которые проводятся
непосредственно после стерилизации.
Оперативные средства контроля:
 Визуальные средства;
 Манометры;
 Термометры;
 Вакуумметры;
 Максимальные термометры;
 Химические средства – стеклянные индикаторы (внутри находятся
химические вещества, которые меняют свой цвет при определенной
температуре). Масса должна окрашиваться однородно!
Для паровых стерилизаторов:
 «Стериконт», «Стеритест» (лента) – 132 °С – 20 мин;
 «Винар» (лента) – 120 °С – 45 мин.
Для воздушных стерилизаторов:
 «Винар» (лента) – 180 °С – цвет «хаки»;
 «Стерикинг» - 180 °С – черный
Используют редко:
 Винную кислоту – 170 °С – стекает и становится белой;
 Гидрохинон – 169 – 171 °С – черный;
 Тиомочевину – 180 °С – ярко-желтый цвет.
Использованная литература:
С.А. Мухина,
И.И. Тарновская
Практическое руководство к предмету
«Основы сестринского дела»
Учебник для медицинских училищ и колледжей
2-е издание, исправленное и дополненное
г. Москва, 2009г.