Тема №4: «Инъекции и пункции. Местное обезболивание». Цель занятия: ознакомить студентов с наиболее распространенными в ветеринарии методами и способами введения лекарственных веществ, а также отработать технику инъекций, пункций и вливаний; Изучить значение местного обезболивания в момент хирургического вмешательства; отработать методику введения животным местноанастеризующих препаратов. Материал и оборудование: животные (лошадь, крупный рогатый скот, собака, кролик); медикаменты; хирургический инструментарий, шприцы. Методика проведения занятия. Преподаватель опрашивает студентов по пройденному материалу, после чего объявляет тему и содержание занятия. Знакомит студентов с различными системами шприцев и игл, после чего показывает, как правильно пользоваться шприцами и фиксировать иглу при инъекции. Знакомит с методом заполнения шприца жидкими лекарственными средствами, сливанием первых порций раствора из колбы в тазик, затем, не касаясь стенок цилиндра шприца, заполнением его, введением поршня в цилиндр шприца. Демонстрирует различные способы инъекций лекарственных веществ: подкожные, внутрикожные, внутримышечные, внутривенные, обращая при этом внимание студентов на необходимость предварительной подготовки операционного поля и рук хирурга. Техника инъекций. Для инъекций используют шприцы разных конструкций и полые иглы. Для взятия крови и внутривенных инъекций чаще применяют иглы Боброва, Сайковича, различные аппараты. Шприц берут в правую руку так, чтобы большой, средний и безымянный пальцы удерживали цилиндр шприца, а конец указательного пальца находился на головке рукоятки поршня. В некоторых случаях удобно брать шприц как скальпель, в положении троакара. Иглу вводят в ткани не более чем на две трети ее длины. Подкожные инъекции делают в любом участке тела животного, но чаще всего в области шеи, внутренней поверхности бедер, грудной стенки, вентральной брюшной стенки, т. е. там, где имеется значительный слой подкожной клетчатки и, следовательно, введение жидкости менее болезненно и она быстро рассасывается. Шерсть в области инъекции выстригают ножницами Купера (брить не следует!) и протирают спиртом. Пальцами левой руки захватывают кожу в складку так, чтобы между указательным и большим пальцами образовалась ямка, в которую и вводят иглу. Этим приемом исключается опасность прокола иглой обеих стенок кожной складки. После инъекции место прокола кожи смазывают спиртовым раствором йода. Крупным животным вводят в одно место не более 20 мл, мелким - 5 мл препарата. Внутрикожные инъекции выполняют при инфильтрационном обезболивании и при некоторых видах прививок. В области инъекции шерсть при прививках выстригают, при операциях выбривают и дезинфицируют спиртом. Тонкую иглу вводят в толщу кожи срезом вверх на глубину 2-3 мм и впрыскивают 0,2-0,3 мл жидкости. Контролем правильности внутрикожного введения служит образование небольшого желвака с резкими границами - «лимонной корочки» (при подкожном введении границы желвака всегда расплывчаты). Внутримышечные инъекции делают чаще всего в толщу ягодичных мышц, трехглавую мышцу плеча, ключичную часть поверхностной грудной мышцы, заднебедренную группу мышц. После подготовки места инъекции плотно прижимают кожу к подлежащим тканям и вводят иглу строго перпендикулярг но к поверхности тела на глубину 4-5 см, но не более чем на две трети длины иглы. По окончании впрыскивания вновь прижимают кожу левой рукой и извлекают иглу. Место инъекции дезинфицируют. Обращают внимание на возможность осложнений при внутримышечных инъекциях при нарушении правил асептики или введения лекарственных средств, которые нельзя простерилизовать - развитие межмышечных флегмон. Внутривенные вливания у крупного и мелкого рогатого скота производят в наружную яремную, наружную грудную или подкожную вену живота (в «молочную» вену), у лошади - в яремную или наружную грудную вену, у свиней - в вену ушной раковины, у собак и кошек - в бедренную, яремную, плюсневую передненаружную или подкожную вену предплечья, у свиней - в большую ушную вену. После подготовки места инъекции сжимают жгутом или рукой центральный участок вены. Иглу продвигают в сосуд наискось. Раствор вводят медленно – 20-50 мл в 1 мин. Преимущество этого способа введения - быстрота действия лекарственных средств на организм животного. Крупным животным вливание производят в их естественном положении, прибегая к отвлекающим средствам (закрутка, носовые щипцы). Место инъекции готовят по всем правилам асептики. Для вливаний используют специальные инфузионные иглы Сайковича и другие диаметром 1-2 мм с острым умеренно скошенным концом и особой канюлей, вставляемой в муфту иглы, а также инфузионные аппараты Боброва, Конькова или цилиндры шприца Жанэ без поршня с присоединенной к нему резиновой трубкой, на конце которой находится канюля для соединения с иглой. Преподаватель показывает правило заполнения инфузионных аппаратов растворами, приемы пункции яремной вены: пережатие вены рукой ниже места ее пункции, прокол вены, присоединение канюли к игле после появления первой струйки крови (канюля должна быть на уровне жидкости, находящейся в цилиндре, а в ней должен быть раствор), затем яремную вену освобождают от пережатия, а цилиндр с жидкостью поднимают выше уровня яремного желоба. После введения препарата яремную вену повторно пережимают ниже иглы, отсоединяют канюлю цилиндра, промывают иглу кровью для предупреждения попадания раствора в периваскулярную и подкожную клетчатку, вену пережимают выше иглы и последнюю извлекают. После извлечения иглы поле операции смазывают 5%-ным спиртовым раствором йода. Преподаватель объясняет, что при внутривенных введениях некоторых лекарственных веществ (хлоралгидрата, хлорида кальция, новарсенола, флавакридина и др.) в случае попадания последних в подкожную и периваскулярную клетчатку могут быть осложнения в виде параперитромбофлебитов. Внутриартериальные инъекции выполняют в пальцевые артерии, общую сонную артерию, аорту. Положение артерии определяют прощупыванием и исследованием пульса. Внутриартериальные инъекции применяют редко. Внутрикостные инъекции чаще всего производят в грудную кость, наружный угол подвздошной кости (маклок), эпифизы большеберцовой, лучевой, бедренной, плечевой костей. Специальную иглу вкалывают в кость после подготовки операционного поля без предварительного разреза кожи. Вливание выполняют медленно, лучше всего капельным способом. Внутрисуставные инъекции осуществляют с диагностической и лечебной целями. Они требуют хорошей анатомо-топографической ориентировки. Внутрибрюшинные и внутриплевральные инъекции производят с диагностической и лечебной целями. Кроме перечисленных способов инъекций могут осуществляться еще такие, как внутрикожные, внутриартериальные, внутриплевральные, внутрикостные и внутрисуставные. Преподаватель демонстрирует внутривенное, внутриаортальное введения, пункцию аорты по Воронину. После показа преподавателем всех способов инъекций и вливаний студенты сами проводят их на подопытных животных. Местное обезболивание. Студенты знакомятся с различными средствами обезболивания животных; практически на животных разных видов отрабатывают различные методы обезболивания. Анестезирующие средства (вещества, вызывающие местное обезболивание). Представляют собой сложные эфиры парааминобензойной кислоты с алкиламином. Новокаин (антагонист сульфаниламидов). Используют в 0,25-0,5%-ных концентрациях для инфильтрационной анестезии, в 2-4%-ных - для проводниковой и в 1-3%-ных - для спинномозговой анестезии. Дикаин (пантокаин). Очень токсичен. Используют в глазной практике в 0,5-2 %-ной концентрации. Совкаин (перкаин). В 30 раз токсичнее новокаина, используется в глазной практике в растворе от 1:2000 до 1: 3000. В отличие от новокаина совкаин не обладает антисульфамидным действием. Ксикаин (ксилокаин, лидокаин). Сильное местноанестезирующее средство. Действует значительно быстрее, сильнее и длительнее новокаина. В полевых (нестационарных) условиях необходимо применять также поверхностную (плоскостную) анестезию для обезболивания кожи, слизистых, синовиальных и серозных оболочек. С этой целью используют хролэтил, лидокаин, тримекаин. В зависимости от места введения и действия анестетика на отделы периферической нервной системы различают: поверхностную (плоскостную), инфильтрационную, проводниковую и эпидуральную анестезии. Студенты под руководством преподавателя практически отрабатывают методику: поверхностной анестезии. Обезболивают конъюнктиву 50-10%-ным раствором новокаина или 1%-ным раствором дикаина. Наблюдают эффект; инфильтрационной анестезии. Пропитывают послойно ткани животного 0,25-0,5%-ным раствором новокаина и наблюдают за угасанием болевой чувствительности; проводниковой анестезии. Инъецируют 2-3%-ный раствор новокаина в окружающие нервный ствол ткани и следят за выключением проводимости чувствительного нервного ствола; эпидуральной анестезии. Используют сакральную эпидуральную анестезию, вводя 1-2%-ный раствор новокаина в эпидуральное пространство крестцового отдела позвоночника. Наблюдают за результатом анестезии. К общему глубокому наркозу в полевых (вне стационара) условиях следует прибегать очень редко, так как для этого необходимо располагать известным временем и соответствующей обстановкой. Поэтому даже при сложных операциях чаще приходится обращаться к сочетанному обезболиванию - использованию местной анестезии на фоне действия нейролептиков или нейролептаналгетиков.