Infection of Sorex minutus by ... larvae (Sarcophaga carnaifa).

Infection of Sorex minutus by Trichinella larvae mediated by blow-fly
larvae (Sarcophaga carnaifa). Andreyanov O.N. All-Russian K.I. Skryabin
Scientific Research Institute of Helminthology.
Summary. One showed at the example of S. minutus that insectivorous
animals could be the reservoirs of Trichinella infection in natural biocenosis. As a
result of the established trophic chains that group of mammals could accumulate
helminth infection.
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ЗАРАЖЕНИЕ ТРАНЗИТНЫХ ХОЗЯЕВ
ЛИЧИНКАМИ TRICHINELLA SPIRALIS
Андреянов О.Н.
ГНУ ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина
Введение. Возбудители трихинеллезов, занимая свою экологическую
нишу в природе, характеризуются эволюционно закрепленным признаком –
полигостальностью. Весь биологический цикл гельминтозооноза происходит в
одном теплокровном организме без выхода во внешнюю среду. На фоне
пищевых связей реализуются механизмы передачи возбудителя как внутри
популяций хозяев, так и вне популяций. Классические пути передачи
(хищничество, каннибализм, некрофагия) выявлены многими авторами [1]. А
такие пути инвазирования как лактогенный путь передачи, каудофагия,
копрофагия,
пищевой
путь посредством нетрадиционных хозяев
(механические переносчики) до сих пор находятся под сомнением. Поэтому
целью настоящей работы явилось изучение перечня беспозвоночных –
возможных механических переносчиков возбудителя трихинеллеза Trichinellа
spiralis.
Материалы
и
методы.
Наработку
инвазионного
материала
(инвазированная мышечная ткань лабораторных животных с личинками T.
spiralis) от инвазированной трихинеллами лисицы, отстреленной в Рязанской
области, проводили согласно методике Ф.К. Скворцовой (2003).
Инвазированных лабораторных животных содержали, кормили и обращались
в условиях вивария согласно общепринятыми ветеринарно-санитарными
правилами.
Во время наступления теплого сезона года 2010 – 2011 гг. инвазионный
материал от лабораторных животных закладывали на хранение в природный
биоценоз в условиях охотохозяйства Рязанской области в пластиковые
контейнеры с металлической сеткой, защищающей от крупных некрофагов,
птиц и грызунов. Каждые 2 недели проводили сбор беспозвоночных
питающихся мышечной тканью и трупным соком тушек животных. Перечень
видов беспозвоночных определяли по зоологическим определителям [3].
Привезенных в лабораторию беспозвоночных помещали под вытяжку в
9
морилку с ватой смоченной медицинским эфиром. Через 5 – 10 минут, после
обездвижевания, беспозвоночных помещали на препаровальный столик и с
помощью глазных ножниц и пинцета извлекали пищеварительную трубку.
После препарирования желудочно-кишечного тракта пищеварительную
трубку целиком (пищевод, мальпигиевы сосуды, среднюю и заднюю кишку)
помещали под компрессорий и микроскопировали при увеличении х9 – х40
светового микроскопа.
Пищеварительную трубку, выделенную от насекомых пастеровской
пипеткой, помещали на часовое стекло с физиологическим раствором и
проводили подсчет обнаруженных личинок гельминта, жизнеспособность,
срок
локализации
и
инвазионность
по
методике
определения
жизнеспособности личинок трихинелл [5].
Результаты и обсуждение. При экспериментальном заражении
беспозвоночных личинками T. spiralis было зарегистрировано 72 насекомых с
личинками гельминта (табл. 1). Из перечня беспозвоночных в опытном
контейнере с трупами лабораторных животных (зараженных личинками
трихинелл) были обнаружены: мертвоед большой (Necrodes littoralis), жук –
могильщик (Necrophorus vespilloides), точечник блестящий (Philonthus
splendens), жук – хищник (Ocypus picipennis), жук – хищник серый (Creophilus
maxillosis), личинки серой (Sarcophaga carnaifa) и синей мясной (Calliphora
erytrocephala) мух. В контрольном контейнере с трупами лабораторных
животных (незараженных личинками трихинелл) перечень беспозвоночных
был аналогичен. В опытном контейнере все насекомые содержали в
пищеварительной трубке личинок T. spiralis. В контрольном контейнере не
было обнаружено ни одного насекомого с личинками.
Таблица 1
Перечень насекомых носителей личинок T. spiralis при
экспериментальном заражении
Вид беспозвоночного
(латинское название
вида)
Mертвоед большой
(Necrodes littoralis)
Жук – могильщик
(Necrophorus
vespilloides)
Точечник блестящий
(Philonthus splendens)
Жук – хищник
(Ocypus picipennis)
Жук – хищник серый
(Creophilus maxillosis)
Опытный контейнер
Исследовано
насекомых
Контрольный контейнер
Обнаружено
личинок
T. spiralis
Исследовано
насекомых
Обнаружено
личинок
T. spiralis
28
11,8 ± 0,42
6
0
21
6,33 ± 0,01
2
0
4
2,0 ± 0,5
5
0
2
1,5 ± 0,75
1
0
2
1,5 ± 0,75
3
0
10
Личинки серой
мясной мухи
(Sarcophaga carnaifa)
Личинки синей
мясной мухи
(Calliphora
erytrocephala)
Всего:
6
1,7 ± 0,28
5
0
9
2,2 ± 0,25
7
0
72
-
29
0
Все личинки трихинелл T. spiralis зарегистрированные в пищевой трубке
беспозвоночных при экспериментальном заражении оказались жизнеспособны
и инвазионны.
Во время тестирования на жизнеспособность личинки трихинелл T.
spiralis проявляли двигательную активность (табл. 2).
При проведении биопробы на белых беспородных мышах личинки
трихинелл оказались инвазионными. После убоя лабораторных животных на
60-й день, компрессорно нами были зарегистрированы личинки зооноза в
мышечной ткани.
При
экспериментальном
экспонировании
личинок
зооноза
беспозвоночным, транзитная локализация гельминта в пищеварительной
трубке оказалась различной. Так, после подсадки беспозвоночных на четверо
суток к зараженному трихинеллами трупу лабораторного животного и
последующей отсадки насекомых на контрольный труп лабораторного
животного (не инвазированного трихинеллами), нами было установлено, что
локализация личинок трихинелл в кишечнике мертвоеда большого происходит
до 12-го дня опыта, у жука – могильщика до 10-го дня, у личинок серой и
синей мясных мух до 6-ти суток. Насекомых - точечника блестящего, жука –
хищника и хищника серого, после отсадки в контрольный контейнер с
трупами незараженных лабораторных животных, не обнаружили.
Таблица 2
Биологические свойства личинок T. spiralis выделенных из
пищеварительной трубки насекомых опытного контейнера
Вид насекомого
Mертвоед большой
Жук – могильщик
Точечник блестящий
Жук – хищник
Жук – хищник серый
Биологические свойства личинок T.
spiralis
Жизнеспо- ИнвазиВремя
собность
онность локализации,
сут.
+
+
12
+
+
10
+
+
+
11
Личинки серой мясной мухи
Личинки синей мясной мухи
+
+
+
+
6
6
Такая
различная
транзитная
локализация
гельминта
среди
беспозвоночных, скорее всего, зависит от температуры окружающей среды,
обмена веществ насекомых и объема потребляемого пищевого кома.
При экспериментальном заражении трихинеллами насекомых было
зарегистрировано небольшое количество обнаруженных личинок трихинелл в
пищеварительном тракте каждого насекомого.
Наибольшее количество личинок паразита в пищеварительной трубке
было обнаружено у мертвоеда большого – 12,4 ± 3,87 (от 9 до 16 личинок
трихинелл в одном насекомом) и жука могильщика – 7,4 ± 4,62 (от 3 до 12
личинок трихинелл). Наименьшее число личинок гельминта зарегистрировано
у точечника блестящего – 2,0 ± 1,2, жука хищника – 1,3 ± 0,45, хищника
серого – 1,2 ± 0,61, личинок серой мясной мухи – 1,8 ± 0,2, личинок синей
мясной мухи 1,9 ± 0,39.
Количественное разнообразие потребления личинок трихинелл,
возможно, зависит от размера диаметра пищеварительной трубки
беспозвоночного, количества и качества потребляемого корма, а так же от
обмена веществ в организме каждого насекомых.
А.В. Меркушев (1954) отмечал наименьшее число обнаруженных
личинок трихинелл у жуков мертвоедов или совсем их отсутствие. Автор
объяснял это тем, что эти виды транзитных хозяев используют падаль не как
пищу, а как место для откладывания яиц и выращивания личинок. Время
локализации личинок гельминта у А.В. Меркушева было иным. Жуки
семейства жужелиц содержали личинок трихинелл до 6-го дня, мертвоеды до
5-ти суток, личинки мясных мух до 8 – 9-ми суток.
Заключение. При экспериментальных исследованиях нами было
установлено, что механическими переносчиками трихинелл (T. spiralis) в
теплый период года, в условиях природного биоценоза, с издавна
существующими трофическими связями, могут служить 7 видов насекомых и
их личинок: мертвоед большой, жук – могильщик, точечник блестящий, жук –
хищник, жук – хищник серый, личинки серой мясной и синей мясной мух.
Транзитное пребывание личинок трихинелл в кишечнике упомянутых
насекомых и их личинок, определяет последних как кратковременных
резервуарных хозяев гельминтоза (от 6 до 12 суток). Количество личинок T.
spiralis в теле насекомых колебалась в пределах от 1,2 ± 0,61 до 12,4 ± 3,87
экземпляров.
Литература: 1. Геллер Э.Р., Тимонов Е.В. Биология и морфогенез
трихинелл // Науч. труды ВАСХНИЛ. М. «Колос», 1976, - С. 6 – 42. 2.
Меркушев А.В. Эпизоотология трихинеллеза и вопросы его диагностики. Дис.
докт. вет. наук, Воронежский зоотехническо-ветеринарный институт. 1954.
418 с. 3. Плавильщиков Н.Н. Определитель насекомых. Краткий определитель
12
наиболее обычных насекомых Европейской части Союза ССР. Издание третье,
Государственное
учебно-педагогическое
издательство
министерства
просвещения РСФСР. Москва – 1957. - 548 с. 4. Скворцова Ф.К. // Труды
ВИГИС. -2003.-Т. 42.- С.600 – 608. 5. Скворцова Ф.К., Андреянов О.Н.,
Гребенкина Л.А. Методика определения жизнеспособности и инвазионности
личинок трихинелл. Рассмотрены и одобрены на секции «Инвазионные
болезни животных» 25 сентября, Москва, 2009, 8 с.
Experimental infection of transit hosts by Trichinella spiralis larvae.
Andreyanov O.N. All-Russian K.I. Skryabin Scientific Research Institute of
Helminthology.
Summary. As a result of the carried out experiments it has been concluded
that 7 insect species with established trophic relations can be the mechanical carriers
of T. spiralis in warm seasons of year. The transit existence of T. spiralis larvae in
intestines of the above insects (their larvae) allows to attribute the latter to shortterm reservoir hosts (6 to 12 days). T. spiralis infection intensity values range
12±0,61 to 12,4±3,87 specimens.
ФОРМИРОВАНИЕ ПАРАЗИТОФАУНЫ У МОЛОДНЯКА
КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В СТОЙЛОВЫЙ ПЕРИОД
Андрушко Е.А.
Ивановская государственная сельскохозяйственная
академия им. Д.К.Беляева
Введение. Микстинвазии с различными сочетаниями компонентов
паразитоценоза широко распространены среди молодняка крупного рогатого
скота и сопровождаются выраженной патологией желудочно-кишечного
тракта, органов дыхания и других систем [1,3]. Смешанные инвазии
проявляются замедлением темпов роста и развития, потерей массы тела
молодняка. При высокой интенсивности инвазии возможен падеж телят [4].
Материалы и методы. Изучение динамики формирования паразитарной
системы проводили в стойловый период (октябрь-март) в хозяйствах
Ивановской области, где подвергали исследованию фекалии от 1200 голов
молодняка крупного рогатого скота от 2-дневного до 10-месячного возраста.
Исследования фекалий для обнаружения ооцист эймерий и криптоспоридий
проводили по методу В.Ф.Никитина [2]. При дифференциации видов эймерий
и криптоспоридий использовали определители М.В.Крылова (1996). Для
обнаружения яиц гельминтов в фекалиях использовали флотационные методы
(Фюллеборна, Щербовича). Кроме того, фекалии культивировали
при
температуре +20...+25С° в течение 4-5дней для дифференциации личинок
стронгилят и стронгилоидесов по определителю В.И. Ивашкина (1981).
13