ИНСТРУКЦИЯ по применению тест-системы

ИНСТРУКЦИЯ
по применению тест-системы «SBV» для выявления РНК вируса Шмалленберг методом
полимеразной цепной реакции
(организация-производитель – ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, г. Москва)
Тест-система «SBV» (test-system «SBV») предназначена для выявления РНК вируса
Шмалленберг (Schmallenberg virus) в биологическом материале методом полимеразной
цепной реакции с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме «реального
времени».
I. ОБЩИЕ ПОЛОЖЕНИЯ
1
Тест-система «SBV», рассчитанная на проведение 50 анализов, включая контроли,
выпускается в 2 формах комплектации:
Форма 1 включает:
 «РИБО-преп» вариант 50 – комплект реагентов для выделения РНК/ДНК из
клинического материала;
 «ПЦР-комплект» вариант FRT – 50F – комплект реагентов для проведения реакции
обратной транскрипции РНК и амплификации кДНК Schmallenberg virus с
гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме «реального времени».
Форма 2 включает:
 «ПЦР-комплект» вариант FRT – 50F – комплект реагентов для проведения реакции
обратной транскрипции РНК и амплификации кДНК Schmallenberg virus с
гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме «реального времени».
Форма комплектации 1 предназначена для проведения полного ПЦР-исследования,
включающего экстракцию РНК из биологического материала, проведение реакции обратной
транскрипции РНК и амплификации кДНК с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в
режиме «реального времени».
Форма комплектации 2 предназначена для проведения реакции обратной
транскрипции РНК и амплификации кДНК с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в
режиме «реального времени». Для проведения полного ПЦР-исследования необходимо
дополнительно использовать для экстракции РНК из исследуемого материала комплект
реагентов «РИБО-преп» производства ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора.
1.1
Комплект реагентов «РИБО-преп» вариант 50 состоит из следующих компонентов:
Раствор для лизиса
Раствор для преципитации
Раствор для отмывки 3
Раствор для отмывки 4
1 флакон, 15,0 см3 (мл)
1 флакон, 20,0 см3 (мл)
1 флакон, 25,0 см3 (мл)
1 флакон, 10,0 см3 (мл)
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 1 из 13
РНК-буфер
4 пробирки по 1,2 см3 (мл)
Комплект реагентов рассчитан на экстракцию ДНК из 50 проб, включая контроли.
1.2
Комплект реагентов «ПЦР-комплект» вариант FRT–50F состоит из следующих
компонентов:
ОТ-ПЦР-смесь-1-FRT Schmallenberg virus
1 пробирка, 0,6 см3 (мл)
ОТ-ПЦР-смесь-2-FEP/FRT
1 пробирка, 0,3 см3 (мл)
Полимераза (TaqF)
1 пробирка, 0,03 см3 (мл)
ТМ-Ревертаза (MMlv)
1 пробирка, 0,015 см3 (мл)
RT-G-mix-2
1 пробирка, 0,015 см3 (мл)
ПКО кДНК Schmallenberg virus / STI
1 пробирка, 0,2 см3 (мл)
ДНК-буфер
1 пробирка, 0,5 см3 (мл)
Комплект реагентов рассчитан на 55 реакций амплификации, включая контроли.
Дополнительно к комплекту реагентов прилагаются контрольные образцы этапа
экстракции
ОКО
1 пробирка, 1,2 см3 (мл)
ВКО STI-87-rec
5 пробирок, по 0,12 см3 (мл)
Упаковка и маркировка.
На пробирках (флаконах) с каждым компонентом должна быть наклеена этикетка с
указанием краткого наименования компонента, количества препарата в пробирке (флаконе),
номера серии и даты изготовления. Комплекты упаковывают в отдельные застегивающиеся
пакеты из полиэтилена. На каждый пакет наклеивают (или вкладывают) этикетку с указанием
наименования комплекта, перечня компонентов, входящих в комплект, количества пробирок
(флаконов) каждого компонента, количества препарата в каждой пробирке (флаконе), номера
серии комплекта, условий хранения, даты изготовления, срока годности.
Комплекты реагентов вкладывают в картонную коробку (пакет из полиэтилена). На
каждую упаковку тест-системы наклеивают этикетку, на которой указывают: наименование
предприятия-изготовителя, полное наименование тест-системы, перечень комплектов, входящих
в тест-систему, номер серии, дату изготовления, срок годности, условия хранения, обозначение
СТО, надпись «Для животных». В каждую упаковку вкладывают инструкцию по применению
тест-системы.
2
Транспортирование и хранение.
Тест-систему транспортировать при температуре от 2 С до 8 С не более 5 суток. При
получении тест-систему разукомплектовать в соответствии с указанными температурами
хранения. Комплект реагентов «РИБО-преп» хранить при температуре от 2 С до 8 °С.
Комплект реагентов «ПЦР-комплект» вариант FRT – 50F (кроме ОТ-ПЦР-смеси-1-FRT
Schmallenberg virus, ОТ-ПЦР-смеси-2-FEP/FRT, ТМ-ревертазы (MMlv), RT-G-mix-2,
полимеразы (TaqF)) хранить при температуре от 2 С до 8 °С. ОТ-ПЦР-смесь-1-FRT
Schmallenberg virus, ОТ-ПЦР-смесь-2-FEP/FRT, полимеразу (TaqF), ТМ-Ревертазу (MMlv) и
RT-G-mix-2 хранить при температуре от минус 24 °С до минус 16 °С. ОТ-ПЦР-смесь-1-FRT
Schmallenberg virus хранить в защищенном от света месте.
3
4
Срок годности тест-системы – 12 месяцев с даты изготовления.
II. ПРИНЦИП МЕТОДА
5
Метод обнаружения РНК вируса Шмалленберг (Schmallenberg virus) основан на
экстракции РНК из биологического материала совместно с РНК экзогенного
неконкурентного внутреннего контрольного образца (ВКО), проведении реакции обратной
транскрипции РНК, амплификации полученной кДНК и гибридизационно-флуоресцентной
детекции продуктов амплификации в режиме «реального времени». Результат амплификации
кДНК вируса Шмалленберг регистрируется на канале JOE/Yellow, результат амплификации
кДНК экзогенного ВКО регистрируется на канале флуоресценции FAM/Green. Использование
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 2 из 13
экзогенного ВКО позволяет контролировать основные этапы ПЦР-анализа (экстракцию РНК,
проведение реакции обратной транскрипции РНК и амплификации кДНК).
III. АНАЛИТИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ
Аналитическая чувствительность
Вид клинического материала
Комплект для
экстракции ДНК
Комплект для
амплификации
и детекции
Аналитическая
чувствительность
кровь (50 мкл),
сыворотка крови (100 мкл),
околоплодная жидкость
(50 мкл),
суспензии тканей и органов
(50 мкл),
суспензии мокрецов, комаров
(100 мкл)
«РИБО-преп»
«ПЦР-комплект»
вариант FRT-50F
1х103 ГЭ/мл
Аналитическая специфичность
Отсутствуют неспецифические реакции при тестировании образцов геномной ДНК
КРС, МРС, комаров родов Culex, Aedes, Anopheles и следующих микроорганизмов: Bovine
adenovirus; Bovine coronavirus; Bovine herpes virus 1; Bovine leukemia virus; Bovine
parainfluenza virus 3; Bovine respiratory syncytial virus; Bovine viral diarrhoea virus 1, Bovine
viral diarrhoea virus 2; Rotavirus; Brucella abortus, Brucella melitensis; Campylobacter jejuni;
Clostridium perfringens; Chlamydophila abortus; Chlamydophila pecorum; Escherichia coli;
Klebsiella pneumoniae; Leptospira interrogans; Listeria monocytogenes; Mycobacterium bovis,
Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium avium, Mycobacterium paratuberculosis;
Mycoplasma bovis, Mycoplasma mycoides, Mycoplasma agalactiae; Pasterella multocida;
Pseudomonas aeruginosa; Salmonella Dublin; Shigella flexneri; Staphylococcus aureus; Yersinia
enterocolitica, Yersinia pseudotuberculosis.
IV. ПОРЯДОК ОТБОРА И ПОДГОТОВКИ ПРОБ
6
Тест-система «SBV» предназначена для выявления РНК вируса Шмалленберг
(Schmallenberg virus) в клиническом и патологическом материале от крупного и мелкого
рогатого скота, в комарах, мокрецах.
От животных с клиническими признаками для исследования используют цельную кровь
или сыворотку крови; от павших животных, новорожденных животных с пороками развития
и мертворожденных плодов исследуют околоплодную жидкость, ткани и органы (головной
мозг, спинной мозг, плацента, пуповина).
7
Взятие, транспортирование и хранение материала для исследования.
7.1 При отборе образцов материала, а также при подготовке проб для исследования
необходимо соблюдать меры, предупреждающие обсеменение объектов внешней среды,
руководствуясь при этом действующими правилами и инструкциями по данному вопросу.
7.2 Материал от каждого животного берут отдельными инструментами.
7.3 Взятие материала для исследования:
 кровь берут в объеме не менее 0,5-1 мл в стерильные пробирки с 3 %-ным раствором
ЭДТА из расчета 10:1 (или с цитратом натрия в стандартной концентрации).
Желательно использовать одноразовые системы взятия крови. Закрытую пробирку с
кровью несколько раз переворачивают.
 для получения сыворотки берут 5 мл крови в пробирку без антикоагулянта.
Желательно использовать одноразовые системы взятия крови.
 фрагменты тканей и органов (головной мозг, спинной мозг, плацента, пуповина)
помещают в стерильный контейнер.
 околоплодную жидкость берут в объеме не менее 1 мл в стерильные пробирки.
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 3 из 13
7.4 Материалы доставляют в лабораторию в течение суток, сохраняя при температуре от
2 °С до 8 °С. Допускается хранение материала при температуре не выше минус 16 °С в
течение 7 суток, при температуре не выше минус 68 °С – в течение длительного времени.
Возможно лишь однократное замораживание-оттаивание материала.
8
Подготовка исследуемого материала.
8.1 Пробы цельной крови, сыворотки крови, околоплодной жидкости используют без
предварительной подготовки. Для экстракции РНК используют 50 мкл цельной крови,
околоплодной жидкости или 100 мкл сыворотки.
8.2 Пробы тканей и органов гомогенизируют с использованием стерильных фарфоровых
ступок и пестиков или автоматического гомогенизатора, затем готовят 10 % суспензию на
стерильном физиологическом растворе или фосфатном буфере. Суспензию отстаивают при
комнатной температуре в течение 2-3 мин и 50 мкл верхней фазы суспензии используют для
экстракции РНК.
8.3 Мокрецов и комаров гомогенизируют в стерильном физиологическом растворе или
фосфатном буфере из расчета 1 особь – 30 мкл раствора с использованием стерильных
фарфоровых ступок и пестиков или автоматического гомогенизатора. Предварительно из
насекомых формируют пулы (не более 50 особей). При наличии автоматического
гомогенизатора TissueLyser LT применяют следующие параметры для гомогенизации:
диаметр шариков – 5 мм; частота – 50 Гц/с; время гомогенизации – 5 мин; объем буфера –
700 мкл (пул из 25 особей), 1000-1500 мкл (пул из 50 особей). Полученные суспензии
центрифугируют при 10 000 g (12 тыс об/мин на центрифуге MiniSpin, Eppendorf, Германия) в
течение 1 мин. Для экстракции РНК используют 100 мкл надосадочной жидкости.
V. ПРОВЕДЕНИЕ ПЦР-АНАЛИЗА
9
ПЦР-анализ проводят в два этапа в отдельных помещениях (зонах).
Для работы требуются следующие материалы и оборудование.
9.1 ЗОНА 1 – для экстракции РНК из исследуемого материала:
 ламинарный бокс (например, «БАВп-01-«Ламинар-С»-1,2», «Ламинарные системы»,
Россия, класс биологической безопасности II тип А).
 твердотельный термостат для пробирок типа «Эппендорф» от 25 °С до 100 °С
(например, «ТЕРМО 24-15», «Биоком», Россия).
 вакуумный отсасыватель медицинский с колбой-ловушкой для удаления надосадочной
жидкости (например, «ОМ-1», г. Ульяновск, Россия).
 микроцентрифуга для пробирок типа «Эппендорф» до 16 тыс об/мин (например,
MiniSpin, Eppendorf, Германия).
 центрифуга/вортекс для пробирок типа «Эппендорф» (например «ТЭТА-2», «Биоком»,
Россия).
 набор электронных или механических дозаторов переменного объема (например,
«Ленпипет», Россия).
 одноразовые наконечники для дозаторов переменного объема с фильтром до 100 мкл, до
200 мкл и до 1000 мкл (например, Axygen, США).
 одноразовые наконечники для дозаторов переменного объема до 200 мкл (например,
Axygen, США).
 одноразовые полипропиленовые завинчивающиеся или плотно закрывающиеся пробирки
на 1,5 мл (например, Axygen, США).
 штативы для пробирок объемом 1,5 мл (например, «ИнтерЛабСервис», Россия) и
наконечников (например, Axygen, США).
 холодильник от 2 °С до 8 °С с морозильной камерой не выше минус 16 С.
 отдельный халат и одноразовые перчатки из латекса.
 емкость для сброса наконечников.
 комплект средств для обработки рабочего места.
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 4 из 13
9.2 ЗОНА 2 – для проведения реакции обратной транскрипции и амплификации с
гибридизационно-флуоресцентной детекцией продуктов ПЦР требуются:
 амплификатор (Rotor-Gene 3000/6000, Corbett Research, Австралия; Rotor-Gene Q,
QIAGEN, Германия или iCycler iQ или iQ5, Bio-Rad, США).
 ПЦР-бокс (например, «БАВ-ПЦР-«Ламинар-С», «Ламинарные системы», Россия).
 центрифуга/вортекс для пробирок типа «Эппендорф» (например «ТЭТА-2», «Биоком»,
Россия).
 набор электронных или механических дозаторов переменного объема (например,
«Ленпипет», Россия).
 одноразовые наконечники для дозаторов переменного объема с фильтром до 100 мкл и
до 200 мкл (например, Axygen, США).
 одноразовые полипропиленовые пробирки для ПЦР объемом 0,2 мл (например, Axygen,
США).
 штативы для наконечников (например, Axygen, США) и пробирок на 0,2 мл (например,
«ИнтерЛабСервис», Россия).
 холодильник от 2 °С до 8 °С с морозильной камерой не выше минус 16 С.
 отдельный халат и одноразовые перчатки из латекса.
 емкость для сброса наконечников.
 комплект средств для обработки рабочего места.
10 Порядок работы
10.1 ЭТАП 1 (зона 1). Экстракция РНК из исследуемого материала
При использовании формы комплектации 1 для экстракции РНК используется
входящий в тест-систему комплект реагентов «РИБО-преп».
При использовании формы комплектации 2 для экстракции РНК используется
комплект реагентов «РИБО-преп» производства ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии
Роспотребнадзора, в соответствии с инструкцией к используемому комплекту. Экстракция
РНК из каждого исследуемого образца проводится в присутствии внутреннего контрольного
образца (ВКО STI-87-rec).
Экстракция РНК из исследуемого материала при помощи комплекта реагентов
«РИБО-преп»:
Раствор для лизиса (если он хранился при температуре от 2 °С до 8 °С) прогреть при
температуре 65 °С до полного растворения кристаллов.
Подготовить необходимое количество одноразовых пробирок на 1,5 мл с плотно
закрывающимися крышками (включая отрицательный контроль экстракции).
Внести в каждую пробирку по 10 мкл ВКО STI-87-rec и по 300 мкл раствора для
лизиса. Промаркировать пробирки.
В пробирки с раствором для лизиса и ВКО STI-87-rec внести по 50-100 мкл
исследуемых проб (в зависимости от исследуемого материала), используя наконечники с
фильтром. В пробирку отрицательного контроля экстракции (В–) внести 100 мкл ОКО.
Содержимое пробирок тщательно перемешать на вортексе и прогреть 5 мин при 65 С в
термостате.
Добавить в пробирки по 400 мкл раствора для преципитации, перемешать на
вортексе.
Процентрифугировать пробирки на микроцентрифуге в течение 5 мин при 13 тыс
об/мин.
Аккуратно отобрать надосадочную жидкость, не задевая осадок, используя вакуумный
отсасыватель с колбой-ловушкой и отдельный наконечник на 200 мкл для каждой пробы.
Добавить в пробирки по 500 мкл раствора для отмывки 3, плотно закрыть крышки,
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 5 из 13
осторожно промыть осадок, переворачивая пробирки 3-5 раз. Можно провести процедуру
одновременно для всех пробирок, для этого необходимо накрыть пробирки в штативе сверху
крышкой или другим штативом, прижать их и переворачивать штатив.
Процентрифугировать при 13 тыс об/мин в течение 1-2 мин на микроцентрифуге.
Осторожно, не захватывая осадок, отобрать надосадочную жидкость, используя
вакуумный отсасыватель с колбой-ловушкой и отдельный наконечник на 10 мкл для каждой
пробы.
Добавить в пробирки по 200 мкл раствора для отмывки 4, плотно закрыть крышки и
осторожно промыть осадок, переворачивая пробирки 3-5 раз.
Процентрифугировать при 13 тыс об/мин в течение 1-2 мин на микроцентрифуге.
Осторожно, не захватывая осадок, отобрать надосадочную жидкость, используя
вакуумный отсасыватель с колбой-ловушкой и отдельный наконечник на 10 мкл для каждой
пробы.
Поместить пробирки в термостат при температуре 65 °С на 5 мин для подсушивания
осадка (при этом крышки пробирок должны быть открыты).
Добавить в пробирки по 50 мкл РНК-буфера. Перемешать на вортексе. Поместить в
термостат при температуре 65 °С на 5 мин, периодически встряхивая на вортексе.
Процентрифугировать пробирки при 13 тыс об/мин в течение 1 мин на
микроцентрифуге. Надосадочная жидкость содержит очищенную ДНК. Пробы готовы к
постановке ПЦР.
Очищенная РНК может храниться до 4 ч при температуре от 2 С до 8 °С. Для
длительного хранения препарат необходимо хранить при температуре не выше минус 68 °С в
течение года.
10.2 ЭТАП 2 (зона 2). Проведение реакции обратной транскрипции РНК и
амплификации кДНК с детекцией в режиме «реального времени»
Общий объем реакции – 25 мкл, объем РНК-пробы – 10 мкл.
Подготовка пробирок для амплификации
Пробирку с ОТ-ПЦР-смесью-1-FRT Schmallenberg virus разморозить, перемешать на
вортексе и сбросить капли с помощью кратковременного центрифугирования.
Для проведения N реакций смешать в отдельной пробирке ОТ-ПЦР-смесь-1-FRT
Schmallenberg virus, ОТ-ПЦР-смесь-2-FEP/FRT, полимеразу (TaqF), TM-Ревертазу
(MMlv) и RT-G-mix-2 из расчета на каждую реакцию:

10 мкл ОТ-ПЦР-смеси-1-FRT Schmallenberg virus;

5 мкл ОТ-ПЦР-смеси-2-FEP/FRT;

0,5 мкл полимеразы (TaqF);

0,25 мкл TM-Ревертазы (MMlv);

0,25 мкл RT-G-mix-2.
Перемешать смесь на вортексе, осадить кратковременным центрифугированием и
внести по 15 мкл в пробирки на 0,2 мл.
Используя наконечник с фильтром, в подготовленные пробирки добавить по 10 мкл
РНК, полученных в результате экстракции из исследуемых или контрольных образцов.
Поставить контрольные реакции амплификации:
а) отрицательный контроль ПЦР (К–) –внести в пробирку 10 мкл ДНК-буфера.
б) положительный контроль ПЦР (К+) – внести в пробирку 10 мкл ПКО ДНК
Schmallenberg virus / STI.
Проведение ПЦР и детекции продуктов амплификации с помощью приборов RotorGene 3000, Rotor-Gene 6000 (Corbett Research, Австралия), Rotor-Gene Q (QIAGEN,
Германия) см. приложение 1.
Проведение ПЦР и детекции продуктов амплификации с помощью приборов iCycler
iQ и iQ5 (Bio-Rad, США) см. приложение 2.
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 6 из 13
VI. УЧЕТ И ИНТЕРПРЕТАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ
Результаты интерпретируются на основании наличия (или отсутствия) пересечения
кривой флуоресценции с установленной на соответствующем уровне пороговой линией, что
определяет наличие (или отсутствие) для данной пробы РНК значения порогового цикла Ct в
соответствующей графе в таблице результатов.
В образце обнаружена РНК вируса Шмалленберг, если для данной пробы значение Ct
на канале JOE/Yellow менее 37.
В образце не обнаружена РНК вируса Шмалленберг, если для данной пробы по каналу
JOE/Yellow значение Сt отсутствует (кривая флуоресценции не пересекает пороговую
линию), а по каналу FAM/Green определено значение Ct, не превышающее 33.
Результат анализа сомнительный, если для данной пробы на канале JOE/Yellow
получено значение Ct больше 37, а значение Ct по каналу FAM/Green не превышает 33. В
этом случае требуется повторно провести ПЦР-исследование соответствующего образца,
начиная с этапа экстракции РНК, и считать, что в образце обнаружена РНК вируса
Шмалленберг при получении аналогичного результата.
Результат анализа невалидный, если для данной пробы не определено (отсутствует)
значение порогового цикла Ct по каналу для флуорофора JOE/Yellow, и по каналу для
флуорофора FAM/Green значение Сt также не определено (отсутствует) или превышает 33. В
этом случае требуется повторно провести ПЦР-исследование соответствующего образца,
начиная с этапа экстракции РНК.
Результат ПЦР-исследования считается достоверным, если получены правильные
результаты для положительного и отрицательного контролей амплификации и
отрицательного контроля экстракции РНК, в соответствии с таблицей оценки
результатов контрольных реакций (см. таблицу 1).
Таблица 1. Оценка результатов анализа контролей
Контроли
В–
К–
K+
Контролируемый
этап анализа
Экстракция РНК
ПЦР
ПЦР
Значение Сt по каналу
FAM/Green
JOE/Yellow
< 33
Нет значений
Нет значений
Нет значений
< 30
< 30

Если для положительного контроля ПЦР (К+) значение порогового цикла Ct по
каналу JOE/Yellow отсутствует или превышает граничное значение, указанное в таблице 1,
необходимо повторить амплификацию для всех образцов, в которых не обнаружена РНК
вируса Шмалленберг.

Появление любого значения Ct в таблице результатов для отрицательного контроля
экстракции РНК на канале JOE/Yellow и/или для отрицательного контроля ПЦР (ДНКбуфер) на любом из каналов свидетельствует о наличии контаминации реактивов или
образцов. В этом случае результаты анализа по всем пробам считаются недействительными.
Требуется повторить ПЦР-исследование всех проб, начиная с этапа экстракции РНК, а также
предпринять меры по выявлению и ликвидации источника контаминации.
VII. МЕРЫ ЛИЧНОЙ ПРОФИЛАКТИКИ
11
Работать только в одноразовых перчатках, использовать и менять при каждой
операции одноразовые наконечники для автоматических дозаторов с фильтрами.
Одноразовую пластиковую посуду необходимо сбрасывать в специальный контейнер,
содержащий дезинфицирующее средство, которое может быть использовано для
обеззараживания
биоматериалов (например, 0,2 % раствор натриевой соли
дихлоризоциануровой кислоты).
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 7 из 13
12 Посуда (ступки и пестики), использованная для гомогенизации, выдерживается в
растворе дезинфицирующего средства (например, 5 % растворе хлорамина Б в течение
одного часа или в растворе хромовой смеси в течение 30 мин), моется водопроводной водой
с поверхностно-активными моющими средствами и, после отмывания в проточной и
деионизованной воде, высушивается в сухожаровом шкафу в течение 4 часов при
температуре 180 С. Металлические инструменты (скальпели, ножницы, пинцеты)
фламбируют, т.е. обрабатывают спиртом и обжигают в пламени горелки.
13 Все лабораторное оборудование, в том числе дозаторы, штативы, лабораторная посуда,
а также все рабочие растворы должны быть строго стационарными. Запрещается их перенос
из одного помещения в другое. Оборудование, материалы и инвентарь в каждой комнате
должны иметь соответствующую маркировку.
14 Поверхности столов, а также помещения, в которых проводится постановка ПЦР,
должны обязательно до начала и после начала работ облучаться ультрафиолетовым светом.
15 Тест-систему хранить в местах, не доступных для детей.
Инструкция разработана ФГБУ «ВГНКИ» (г. Москва) совместно с ФБУН ЦНИИ
Эпидемиологии Роспотребнадзора (111123, г. Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а).
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 8 из 13
ПРИЛОЖЕНИЕ 1
ПРОВЕДЕНИЕ ОБРАТНОЙ ТРАНСКРИПЦИИ, АМПЛИФИКАЦИИ И ДЕТЕКЦИИ
ПРОДУКТОВ АМПЛИФИКАЦИИ С ПОМОЩЬЮ ПРИБОРОВ Rotor-Gene 3000/6000
(Corbett Research, Австралия) и Rotor-Gene Q (QIAGEN, Германия)
А. Проведение амплификации и детекции флуоресцентного сигнала
Поместить подготовленные для проведения ПЦР пробирки в ротор амплификатора
Rotor-Gene (ячейки ротора пронумерованы, эти номера используются в дальнейшем для
программирования положения проб в амплификаторе).
Запрограммировать прибор.
Для работы с прибором Rotor-Gene 3000 следует использовать программу RotorGene версии 6, с прибором Rotor-Gene 6000 и Rotor-Gene Q – программу Rotor-Gene 6000
версии 1.7 (build 67) или выше.
Далее по тексту термины, соответствующие разным версиям приборов и
программного обеспечения указаны в следующем порядке: для прибора RotorGene 3000 / для англоязычной версии программы Rotor-Gene 6000 (Rotor-Gene Q) / для
русскоязычной версии программы Rotor-Gene 6000.
 Нажать кнопку New/Новый в основном меню программы.
 Выбрать тип ротора. Поставить отметку в окошке рядом с надписью No Domed 0.2 ml
Tubes/Locking ring attached/Кольцо закреплено.
 Нажать кнопку Next/Далее.
 Выбрать объем реакционной смеси: Reaction volume/Объем реакции – 25 мкл. Для
Rotor-Gene 6000 должно быть отмечено окошко 15 l oil layer volume/15 μL объем
масла/воска.
 Нажать кнопку Next/Далее.
 В верхней части окна нажать кнопку Edit profile/Редактор профиля.
 Задать следующие параметры эксперимента:
Измерение
Кол-во
Этап
Температура, °С
Время
флуоресценции
циклов
1
50
30 мин
–
1
2
95
15 мин
–
1
95
10 с
–
3
60
20 с
–
5
72
10 с
–
95
10 с
–
4
55
20 с
FAM/Green, JOE/Yellow
40
72
10 с
–




Нажать дважды кнопку OK/Да.
В нижней части окна нажать кнопку Calibrate/Gain Optimisation/Опт.уровня сигн. В
открывшемся окне нажать кнопку Calibrate Acquiring/Optimise Acquiring/Опт. Детекмых, выбрать функцию: Perform Calibration Before 1st Acquisition/Perform Optimisation
Before 1st Acquisition/Выполнить оптимизацию при 1-м шаге детекции. Для обоих
каналов установить параметры Min Reading/Миним. Сигнал – 5Fl и Max
Reading/Максим. Сигнал – 10Fl. Окно закрыть, нажав кнопку Close/Закрыть.
Нажать кнопку Next/Далее, запустить амплификацию кнопкой Start run/Старт.
Дать название эксперимента и сохранить его на диске (в этом файле будут
автоматически сохранены результаты данного эксперимента).
В процессе работы амплификатора или по окончании его работы необходимо
запрограммировать положение пробирок в роторе. Для этого надо использовать кнопку
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 9 из 13
Edit samples/Правка образцов (в нижней правой части основного окна). Все
исследуемые образцы и контроли обозначить как Unknown/Образец.
Б. Анализ результатов
Анализ результатов амплификации ВКО (канал FAM/Green):
 Нажать
в
меню
кнопку
Analysis/Анализ,
выбрать
режим
анализа
Quantitation/Количественный, нажать кнопку Cycling A. FAM/Cycling A. Green,
Show/Показать.
 Отменить автоматический выбор Threshold/Порог.
 В меню основного окна Quantitation analysis/Количественный анализ должна быть
активирована кнопка Dynamic tube/Динамич.фон и Slope Correct/Коррек. уклона.
 В меню окна More settings/Outlier Removal/Устранение выбросов установить значение
NTC threshold/Порог Фона – ПФ (NTC) – 10%.
 Выбрать линейную шкалу графического изображения результатов, нажав кнопку Linear
scale/Линейная шкала, в нижней части окна справа (если эта шкала активна по
умолчанию, вместо кнопки Linear scale/Линейная шкала видна кнопка Log
scale/Лог.шкала).
 В меню CT Calculation/Вычисление CT (в правой части окна) выставить
Threshold/Порог = 0.05.
В таблице результатов (окно Quant. Results/Количественные Результаты) появятся
значения Ct.
Анализ результатов амплификации специфического участка кДНК вируса
Шмалленберг (канал JOE/Yellow):
 Нажать
в
меню
кнопку
Analysis/Анализ,
выбрать
режим
анализа
Quantitation/Количественный, нажать кнопку Cycling A. JOE/Cycling A. Yellow,
Show/Показать.
 Отменить автоматический выбор Threshold/Порог.
 В меню основного окна Quantitation analysis/Количественный анализ должна быть
активирована кнопка Dynamic tube/Динамич.фон и Slope Correct/Коррек. уклона.
 Выбрать линейную шкалу графического изображения результатов, нажав кнопку Linear
scale/Линейная шкала, в нижней части окна справа (если эта шкала активна по
умолчанию, вместо кнопки Linear scale/Линейная шкала видна кнопка Log
scale/Лог.шкала).
 В меню окна More settings/Outlier Removal/Устранение выбросов установить значение
NTC threshold/Порог Фона – ПФ (NTC) – 10%.
 В меню CT Calculation/Вычисление CT (в правой части окна) выставить Threshold/Порог
= 0.1.
В таблице результатов (окно Quant. Results/Количественные Результаты) появятся
значения Ct.
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 10 из 13
ПРИЛОЖЕНИЕ 2
ПРОВЕДЕНИЕ ОБРАТНОЙ ТРАНСКРИПЦИИ, АМПЛИФИКАЦИИ И ДЕТЕКЦИИ
ПРОДУКТОВ АМПЛИФИКАЦИИ С ПОМОЩЬЮ ПРИБОРОВ iCycler iQ и iQ5
(Bio-Rad, США)
А. Проведение амплификации и детекции флуоресцентного сигнала
Включить прибор и блок питания оптической части прибора. Проводить измерения не
менее чем через 30 мин после включения оптической части прибора.
Открыть программу iCycler.
Задать схему планшета – расположение пробирок в модуле и измерение флуоресцентного
сигнала:
 Для прибора iQ5 для создания схемы планшета в окне Selected Plate Setup модуля
Workshop нажать кнопку Create New или Edit. Редактировать схему планшета в режиме
Whole Plate loading. В опции Select and load Fluorophores задать измерение
флуоресцентного сигнала во всех пробирках по каналам FAM и JOE. Задать объем
реакции (Sample Volume) 25 мкл, тип крышек (Seal Type): Domed Cap, тип пробирок (Vessel
Type): Tubes. Сохранить заданную схему планшета, нажав кнопку Save&Exit Plate Editing.
 Для прибора iCycler iQ отредактировать схему планшета в окне Edit Plate Setup модуля
Workshop. Для этого в опции Samples: Whole Plate Loading задать схему расположения
образцов в реакционном модуле и указать имя каждой пробы в окне Sample Identifier. В
опции Select and load Fluorophores задать измерение флуоресцентного сигнала во всех
пробирках по каналам FAM и JOE. Сохранить схему планшета, задав имя файла в окне
Plate Setup Filename (с расширением «.pts») и нажав кнопку Save this plate setup (в
верхней части экрана). Можно редактировать уже использованную ранее схему
планшета, для этого в окне Library открыть View Plate Setup, выбрать нужный Plate
Setup (файл с расширением «.pts») и нажать кнопку Edit справа. Отредактированный
файл нужно также сохранить перед использованием. Назначить использование данной
схемы планшета, нажав кнопку Run with selected protocol.
Задать программу амплификации.
Этап
Температура, °С
Время
1
2
50
95
95
60
72
95
55
72
30 мин
15 мин
10 с
25 с
25 с
10 с
25 с
25 с
3
4


Измерение
флуоресценции
–
–
–
–
–
–
FAM, JOE
–
Кол-во
циклов
1
1
5
40
Для прибора iQ5 для создания протокола в окне Selected Protocol модуля Workshop нажать
кнопку Create New или Edit. Задать параметры амплификации и сохранить протокол, нажав
кнопку Save&Exit Protocol Editing. При последующих постановках можно выбрать файл с
этой программой в блоке Protocol (по умолчанию файлы протоколов сохраняются в папке
Users).
Для прибора iCycler iQ создать программу амплификации, выбрав опцию Edit Protocol
модуля Workshop. Для этого в нижнем окне задать параметры амплификации (количество
циклов, время и температуру циклирования), а в окне справа указать шаг считывания
флуоресцентного сигнала: Cycle 3 – Step 2. Сохранить протокол, задав имя файла в окне
Protocol Filename (SBV.tmo) и нажав кнопку Save this protocol (в верхней части экрана).
При последующих постановках можно выбрать файл с этой программой в закладке View
Protocol в модуле Library. Выбрав или отредактировав нужную программу, назначить ее
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 11 из 13
использование, нажав кнопку Run with selected plate setup.
Поместить подготовленные для проведения ПЦР пробирки в амплификатор.
Запрограммировать прибор.
Запустить выполнение выбранной программы SBV с заданной схемой планшета:
 Для прибора iQ5 перед запуском выполнения программы следует проверить правильность
выбранного протокола (Selected Protocol) и схемы планшета (Selected Plate Setup). Для
запуска нажать кнопку Run. Выбрать для измерения факторов лунок вариант Collect Well
Factors from Experimental Plate. Нажать кнопку Begin Run, дать название эксперимента (в
этом файле будут автоматически сохранены результаты данного эксперимента) и нажать
OK.
 Для прибора iCycler iQ перед запуском выполнения программы в окне Run Prep следует
проверить правильность выбранного имени протокола и схемы планшета. Выбрать для
измерения факторов лунок вариант Experimental Plate в меню Select well factor source.
Задать объем реакционной смеси в окне Sample Volume – 25 мкл. Для запуска нажать
кнопку Begin Run, дать название эксперимента (в этом файле будут автоматически
сохранены результаты данного эксперимента) и нажать OK.
После окончания программы приступить к анализу результатов.
Б. Анализ результатов
Анализ результатов амплификации ВКО (канал FAM)
 Для прибора iQ5 выбрать нужный файл с данными анализа (в окне Data File модуля
Workshop) и нажать кнопку Analyze. Выбрать в окне модуля данные по каналу FAM. При
этом должен быть выбран режим анализа данных PCR Base Line Subtracted Curve Fit
(выбирается по умолчанию). Чтобы установить уровень пороговой линии, нужно
перетащить ее курсором при нажатой левой кнопке мыши. Чтобы вывести на экран таблицу
результатов, нажать кнопку Results.
 Для прибора iCycler iQ в модуле Library активировать окно View Post-Run Data. В окне
Data Files выбрать нужный файл с данными анализа и нажать кнопку Analyze Data. В опции
PCR Quantification в меню Select a Reporter выбрать значок канала FAM-490. При этом
должен быть выбран режим анализа данных PCR Base Line Subtracted Curve Fit
(выбирается по умолчанию). В меню Threshold Cycle Calculation выбрать режим ручной
установки пороговой линии и автоматический расчет базовой линии. Для этого в
подменю Baseline Cycles выбрать Auto Calculated, а в подменю Threshold Position
выбрать User Defined. Чтобы установить уровень пороговой линии, нужно перетащить ее
курсором при нажатой левой кнопке мыши. Нажать на клавишу Recalculate Threshold
Cycles. В таблице результатов появятся значения Ct.
Анализ результатов амплификации специфического участка кДНК вируса
Шмалленберг (канал JOE)
 Для прибора iQ5 выбрать в окне модуля данные по каналу JOE, отключив кнопку FAM.
При этом должен быть выбран режим анализа данных PCR Base Line Subtracted Curve
Fit (выбирается по умолчанию). Чтобы установить уровень пороговой линии, нужно
перетащить ее курсором при нажатой левой кнопке мыши. Чтобы вывести на экран таблицу
результатов, нажать кнопку Results.
 Для прибора iCycler iQ в опции PCR Quantification в меню Select a Reporter выбрать
значок канала JOE-530. При этом должен быть выбран режим анализа данных PCR Base
Line Subtracted Curve Fit (выбирается по умолчанию). В меню Treshold Cycle
Calculation выбрать режим ручной установки пороговой линии и автоматический расчет
базовой линии. Для этого в подменю Baseline Cycles выбрать Auto Calculated, а в
подменю Threshold Position выбрать User Defined. Чтобы установить уровень пороговой
линии, нужно перетащить ее курсором при нажатой левой кнопке мыши. Нажать на
клавишу Recalculate Threshold Cycles. В таблице результатов появятся значения Ct.
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 12 из 13
Лист вносимых изменений
Редакция
Место внесения
изменений
15.04.13
OM
Нижний колонтитул
Суть вносимых изменений
Формат и форма вынесены перед каталожным
номером.
Формат FRT Форма 2: Кат. №: VET-62-FRT(RG,iQ)-K / Дата изменения: 15.04.13 / стр. 13 из 13