Лимфатический регион глаза

Ю.И. Бородин1, Н.П. Бгатова1, В.В. Черных2, А.Н. Трунов2, В.И. Братко2 ,
А.А. Пожидаева1, В.И. Коненков1
ЛИМФАТИЧЕСКИЙ РЕГИОН ГЛАЗА
1
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «НИИ
клинической и экспериментальной лимфологии», ул. Тимакова, 2, 630060,
Новосибирск, Российская Федерация
2
ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова
Министерства здравоохранения Российской Федерации», Новосибирский филиал,
ул. Колхидская, 10, 630096, г. Новосибирск, Российская Федерация
1
Yu. Borodin, 1N.P. Bgatova, 2V.V. Chernikh, 2A.N. Trunov,
2
V.I. Bratko, 1A.A.
Pozhidaeva, 1V.I. Konenkov
LYMPHATIC REGION OF THE EYE
1
Federal State Budgetary Scientific Institution «Scientific Institute of clinical and
experimental lymрhology», 2, Timakov St, 630060, Novosibirsk, Russian Federation
2-
The academician S.N. Fyodorov Federal State Institution «Intersectoral Research and
Technology Complex «Eye microsurgery» Ministry of Health of the Russian
Federation», Novosibirsk Branch 10, Kolkhidskaya str., 630096, Novosibirsk, Russian
Federation
Резюме
В связи с противоречивостью данных о существовании лимфатического
дренажа внутриглазной жидкости, целью исследования было выявление и
изучение ультраструктурной организации путей циркуляции внутриглазной
жидкости в структурах передней камеры глаза человека. В качестве объекта
исследования были взяты фрагменты энуклеированных по медицинским
показаниям глаз больных (n=5). С помощью иммуногистохимического и
электрономикроскопического
исследований
лимфатические
в
капилляры
цилиарном
1
выявлены
теле
и
органоспецифические
показано
наличие
структурированных
интерстициальных
пространств
–
тканевых
щелей,
ограниченных коллагеновыми волокнами и фибробластами во всех структурах
переднего сегмента глаза человека. Согласно представлениям о лимфатическом
регионе, включающем несосудистые пути движения тканевой жидкости –
прелимфатики, лимфатические сосуды и регионарные лимфатические узлы,
можно говорить о лимфатическом регионе глаза. В структуре лимфатического
региона глаза, на основании полученных наших выделены первые 2 звена тканевые щели – прелимфатики и лимфатические капилляры цилиарного тела
Далее следуют лимфатические сосуды мягких покровов головы, 3-им звеном
лимфатического региона являются лимфатические узлы головы и шеи.
Ключевые слова: лимфатический регион глаза, прелимфатики,
органоспецифические лимфатические капилляры цилиарного тела
Summary
Due to the conflicting data on the existence aqueous humor lymphatic drainage,
the ultrastructural organization of circulation pathways of the aqueous humor in the
anterior chamber of the human eye were the purpose of this study. The fragments of
enucleated eye patients (n = 5) were used. The organ-specific lymph capillaries in the
ciliary body and structured interstitial spaces - tissue gaps bounded by collagen fibers
and fibroblasts in the anterior segment of the human eye were revealed by using
immunohistochemical and electron microscopy studies. According to the ideas of the
lymphatic region that includes the path of non-vascular tissue fluid - prelymphatics,
lymph vessels and regional lymph nodes, it is possible to speak about lymphatic region
of the eye. In the eyes lymphatic region structure, based on the our obtained date the
first 2 link - tissue gap - prelymphatics and lymphatic capillaries of the ciliary body
2
were revealed, followed by lymphatic vessels of soft tissues of the head, the third
lymphatic region link are the lymph nodes of the head and neck.
Keywords: lymphatic region of the eye, prelymphatics, organ-specific lymph
capillaries of the ciliary body
Одной из функций лимфатической системы является поддержание
гомеостаза тканевой жидкости и удаление интерстициальной жидкости и белков в
большинстве тканей и органов. Транспорт белков тканевой жидкости
в
кровеносные капилляры ограничен размером молекул. В то же время начальные
капилляры лимфатической системы могут иметь неплотные контакты между
соседними
эндотелиальными
клетками,
что
позволяет
удаление
из
интерстициальных пространств более крупных молекул и даже клеток [1].
Внутриглазная жидкость или водянистая влага глаза, заполняющая
переднюю и заднюю камеры глаза, омывает бессосудистые роговицу и хрусталик
средой,
аналогичной
крови,
обеспечивая
питанием,
кислородом
и
нейротрансмиттерами. Она способствует обмену веществ в стекловидном теле и
сетчатке глаза, путем удаления продуктов метаболизма из аваскулярного
переднего сегмента, состоящего из линзы, роговицы и трабекулярной сети [2].
Секреция и динамика внутриглазной жидкости имеют решающее значение для
функционирования глаза.
В научной литературе остается дискуссионным вопрос о путях оттока
внутриглазной жидкости. Согласно имеющимся представлениям, основными
структурами глаза, связанными с динамикой тканевой жидкости являются
цилиарное тело (место продукции тканевой жидкости), трабекулярная сеть и
3
увеосклеральный путь (основные пути оттока тканевой жидкости) [3]. Полагают,
что внутриглазная жидкость выделяется эпителиальной выстилкой цилиарных
отростков и покидает переднюю камеру при обычном пути через трабекулярную
сеть, Шлеммов канал и далее через водяные вены, эписклеральные вены
поступает в системный кровоток [4].
На этом пути, тканевая жидкость течет через основание радужной
оболочки (угол камеры, образованный радужной оболочкой и роговицей) через
интерстиций
цилиарного
тела
в
супрахориоидальное
пространство.
Внутриглазная
жидкость, как полагают, чтобы оставить супрахориоидальное
пространство,
протекает
через
рыхлую
соединительную
ткань
вокруг
кровеносных сосудов склеры, а также непосредственно через ткани склеры.
Предполагалось, что жидкость проникает в ткани орбиты периокулярно. Тем не
менее, окончательно дренаж жидкости из супрахориоидального пространства
непонятен, а предполагаемая сумма водянистой влаги, которая покидает глаз по
увеосклеральному пути, значительно варьирует. Разными авторами показано, что
от 5 до 35% от общего оттока приходится на увеосклеральный дренаж.
Увеосклеральный
отток может быть рассмотрен как аналог лимфатического
дренажа в других органах, так как в тканевой жидкости могут быть белки из
цилиарной мышцы, цилиарных отростков и сосудистой оболочки [2].
Однако, имея существенное значение в удалении внеклеточной жидкости
и растворенных веществ в других тканях, лимфатическая система, как считалось,
отсутствует в глазном яблоке [5]. Отток жидкости через склеру рассматривался
как аналог лимфатического дренажа для удаления белков из глаза [6].
4
К настоящему времени при использовании иммуногистохимических
маркеров эндотелиоцитов лимфатических сосудов выявлены лимфатические
сосуды в цилиарном теле [7, 8], однако не показана их ультраструктурная
организация. Является общепринятым, что образующаяся тканевая жидкость
проходит через рыхлую соединительную ткань вокруг кровеносных сосудов и
через строму структур глаза, но не уделяется внимания структуре тканевых
несосудистых путей оттока внутриглазной жидкости.
Целью исследования являлось выявление и изучение ультраструктурной
организации путей несосудистой циркуляции внутриглазной жидкости в
структурах передней камеры глаза человека.
Материал и методы. В качестве объекта исследования были взяты
фрагменты энуклеированных по медицинским показаниям глаз больных (n=5).
Для морфологического изучения биологические образцы фиксировали в 10%
растворе
нейтрального
гистологической
методике
формалина,
обрабатывали
и
в
заливали
парафин.
по
стандартной
Парафиновые
срезы
окрашивали гематоксилином и эозином и с использованием антител. Все этапы
иммуногистохимической реакции (депарафинизация, демаскировка, инкубация с
первичными антителами и т.д.) проводили в автоматическом режиме на аппарате
BENCHMARK/XT (Ventana). Использовали моноклональные антитела к маркерам
эндотелиоцитов кровеносных сосудов CD31 и CD34 (Novocasro), лимфатических
сосудов LYVE -1 (DCS ImmunoLine) и Prox-1 (Monosan), к маркеру рецептора к
фактору роста фибробластов FGFR (Abcam). Полученные препараты глаза
изучали в световом микроскопе «Leiсa DM», фотографировали с помощью
компьютерной
программы
«Аvigion».
5
Для
исследования
в
электронном
микроскопе образцы глаза фиксировали в 1% растворе ОsO4 на фосфатном буфере
(pH=7,4), дегидратировали в этиловом спирте возрастающей концентрации и
заключали в эпон. Из полученных блоков готовили полутонкие срезы толщиной 1
мкм на ультратоме Leica UC7/FC7, окрашивали толуидиновым синим, изучали
под световым микроскопом и выбирали необходимые участки тканей для
исследования в электронном микроскопе. Из отобранного материала получали
ультратонкие срезы толщиной 35-45 нм, контрастировали насыщенным водным
раствором уранилацетата и цитратом свинца и изучали в электронном микроскопе
JEM 1400.
Результаты исследования.
Первоначально,
для
достижения
задней
камеры
глаза,
различные
компоненты водянистой влаги должны пройти три тканевых компонента
цилиарных отростков – стенки капилляра, стромы, бислой эпителия [3]. В
цилиарном
теле
коллагеновыми
отмечали
волокнами
широкие
и
межтканевые
щели,
ограниченные
фибробластами,
что
подтвердило
иммуногистохимическое окрашивание на маркер рецептора фибробластов (рис.
1А).
Особенно
межтканевые
электронномикроскопическом
щели
исследовании.
хорошо
Наблюдали
выявлялись
при
интерстициальные
пространства различного размера и электронной плотности, ограниченные
коллагеновыми фибриллами, волокнами, фибробластами и их отростками (рис.
1Б). Обращала внимание структурированность интерстициального пространства в
цилиарном теле - направленность коллагеновых волокон, фибробластов и их
отростков была как вдоль пучков гладкомышечных волокон, так и к цилиарным
отросткам (рис. 1А).
6
Структурированность интерстициального пространства отмечали и в
строме радужной оболочки. В данном случае интерстициальные щели окружали
кровеносные сосуды и располагались параллельными рядами вдоль органа
и
также, как и в цилиарном теле, были ограничены коллагеновыми волокнами и
фибробластами (рис. 1В).
В склере и роговице глаза также отмечали упорядоченное расположение
коллагеновых волокон и фибробластов. Между пучками коллагеновых волокон
были расположены электронно-светлые пространства, в которых находились
фибробласты и их длинные отростки. Отростки фибробластов располагались
параллельно направлению пучков коллагеновых волокон (рис. 1Г, Д).
По терминологии M.Fёldi. (1999), тканевые щели, содержащие тканевую
жидкость, являются путями несосудистой микроциркуляции в интерстиции прелимфатиками. Они находятся вблизи кровеносных сосудов, располагаются
экстра - или интраадвентициально, либо окружают лимфатические капилляры [9].
Следовательно,
водянистая
влага
глаза
течет
по
структурированным
интерстициальным пространствам – прелимфатикам.
Для выявления лимфатических сосудов в цилиарном теле мы использовали
специфические маркеры эндотелиоцитов лимфатических сосудов LYVE-1 и Prox1 [10]. При окрашивании препаратов глаза на данные маркеры наблюдали
подобие трабекул вдоль мышечных волокон цилиарного тела (рис. 2А). При
электронномикроскопическом анализе было выявлено, что вдоль мышечных
волокон цилиарного тела располагаются клетки, которые имеют небольшое
содержание органелл в вытянутых узких участках цитоплазмы, межклеточные
контакты типа наложения и открытые межклеточные контакты (рис. 2Б).
7
Подобные структуры, сходные с лимфатическими капиллярами, были отмечены и
в строме цилиарного тела.
Обнаруженные вытянутые клетки, образующие каналы, преимущественно
вдоль
мышечного
волокна цилиарного тела
окрашивались
на
маркеры
эндотелиоцитов лимфатических сосудов LYVE-1 и Prox-1 (рис. 2А), не
окрашивались на маркеры кровеносных сосудов CD31 и CD34 (рис. 2В) и не
имели базальной мембраны. Они контактировали с коллагеновыми фибриллами
(рис. 1Б) и по структуре были сходны с отростками фибробластов, но не всегда
окрашивались на маркеры фибробластов и имели в цитоплазме редкие везикулы.
В научной литературе последних лет мы встретили работы, в которых при
использовании молекулярных маркеров к эндотелию лимфатических сосудов
методами иммуногистохимии, иммунофлуоресценции и иммуноэлектронной
микроскопии в цилиарном теле выявлены структуры, окрашивающиеся на
молекулярные маркеры эндотелиоцитов лимфатических сосудов – LYVE-1 и
Podoplanin [7,8]. Авторы описывают данные структуры, как образующие
трабекулы в цилиарном теле, расположенные в виде узких полосок вдоль
цилиарной мышцы и иногда лежащие отдельно в строме цилиарного тела.
Электронно-микроскопическими исследованиями
выявили плоские клетки с
тонкими цитоплазматическими выростами [7]. Они не окрашивались на маркеры
эндотелия кровеносных сосудов (CD34) и не имели базальной мембраны [8].
Данные структуры были охарактеризованы как лимфатические каналы.
Описанные авторами структуры соответствуют выявленным нами в
цилиарном теле каналам, образованными фибробластоподобными клеткам,
расположенным вдоль мышечного волокна и редко одиночно в строме
8
цилиарного тела. В связи со сказанным, представляют интерес имеющиеся
данные о способности фибробластов при определенных условиях окрашиваться
на маркеры к рецепторам
факторов роста сосудов – VEGF-C
и VEGF-D,
регулирующих рост лимфатических сосудов [11], на маркер эндотелия
лимфатических сосудов – Podoplanin [12], также функциональная взаимосвязь
между фактором роста фибробластов FGF2 и LYVE-1 [13]. Исходя из этих
данных, выявленные нами фибробластоподобные клетки, по-видимому, можно
рассматривать как аналоги эндотелия лимфатических капилляров в цилиарном
теле, а образованные ими каналы – аналоги лимфатических капилляров, имеющие
органоспецифические особенности, которые собирают тканевую жидкость и
продукты метаболизма для направленного транспорта в лимфатическую систему,
а затем в кровоток.
Кровеносные сосуды цилиарного тела имели иную форму и локализацию
(рис.2В).
Окрашивание
препаратов
глаза
на
маркеры
эндотелиоцитов
кровеносных сосудов CD31 и CD34 показало, что строма цилиарного тела
равномерно пронизана большим количеством кровеносных капилляров, артериол
и венул. Наиболее крупные по размеру просветов сосуды расположены у
основания цилиарных отростков. Форма просветов выявляемых кровеносных
сосудов преимущественно округлая или эллипсоидная (рис. 2Г). Различий в
окрашивании
сосудов
с
помощью
использованных
маркеров
CD34
и
CD31обнаружено не было.
Известно, что в отличие от трабекулярного пути, внутриглазное давление
имеет незначительное влияние на увеосклеральный отток. По мнению авторов [6],
лимитирующей стадией в увеосклеральном оттоке может быть состояние
9
цилиарной мышечной ткани. Показано, что сокращение цилиарной мышцы
уменьшает, а релаксация увеличивает увеосклеральный отток [6]. Наличие
лимфатических капилляров вдоль мышечных волокон цилиарного тела может
быть одним из факторов изменения увеосклерального оттока при сократительной
активности цилиарной мышцы. Сокращение мышечных волокон приводит, повидимому, к пульсирующим движениям стенки лимфатических капилляров и
продвижению внутриглазной жидкости по лимфатическим путям.
Кроме того, имеются данные, что регуляция увеосклерального оттока
возможна путем воздействия на холинэргические рецепторы. Показано, что
адреналин
увеличивает
увеосклерального
отток,
скорее
всего,
путем
стимулирования Beta (2) адренергических рецепторов. Простагландин F (2-альфа)
и простагландин F (2-альфа) -аналоги эффективно снижают внутриглазное
давление за счет увеличения увеосклерального потока. Таким образом, по мнению
авторов, возможно усиливать водный отток через увеосклеральный путь, что
является ценным вкладом в лечение глаукомы, но по-прежнему ограничено
понимание его физиологической роли [6].
Размышляя
над
особенностями
водного дренажа
глаза,
наличием
трабекулярного и увеосклерального пути оттока внутриглазной жидкости, можно
предположить, что первый путь обеспечивает функцию глаза, как зрительного
анализатора, является функциональным, второй поддерживает обмен веществ
глазного яблока, то есть является трофическим.
Нами
с
помощью
электрономикроскопического
иммуногистохимического
исследований
выявлены
и
органоспецифические
лимфатические капилляры в цилиарном теле. Кроме того показано наличие
10
структурированных
интерстициальных
пространств
–
тканевых
щелей,
ограниченных коллагеновыми волокнами и фибробластами во всех структурах
переднего сегмента глаза человека.
Согласно нашим представлениям о лимфатическом регионе, включающем
несосудистые пути движения тканевой жидкости – прелимфатики, лимфатические
сосуды
и
регионарные
лимфатические
узлы
[14],
можно
говорить
о
лимфатическом регионе глаза. В структуре лимфатического региона глаза, на
основании наших данных, мы выделяем первые 2 звена - тканевые щели –
прелимфатики и органоспецифические лимфатические сосуды цилиарного тела,
далее
лимфатические
сосуды
мягких
покровов
головы,
3-им
звеном
лимфатического региона являются лимфатические узлы головы и шеи.
Полученные результаты внушают мысль о существовании двух дренажных
механизмов глаза. Первый представлен трабекулярной сетью, Шлеммовым
каналом
и
водяными
венами,
сбрасывающими
водное
содержимое
непосредственно в кровоток. Второй механизм включает все 3 звена стандартного
лимфатического региона [14]: тканевые щели цилиарного тела (прелимфатики),
лимфатические капилляры цилиарного тела и лимфатические сосуды мягких
покровов головы, регионарные лимфатические узлы головы и шеи. По-видимому,
структурированность и состояние путей оттока внутриглазной жидкости может
определять состояние трофики и дренажа структур глаза, внутриглазное давление
и функцию органа зрения.
Список цитированной литературы
11
1. Paniagua D., Jiménez L., Romero C., Vergara I., Calderón A., Benard M. et al.
Lymphatic route of transport and pharmacokinetics of micrurus fulvius (coral
snake) venom in sheep. Lymphology. 2012; 45 (4): 144-153.
2. Kim M., Johnston M.G., Gupta N., Moore S., Yücel Y.H. A model to measure
lymphatic drainage from the eye. Exp. Eye Res. 2011; 93(5): 586-591.
3. Goel M., Picciani R.G., Lee R.K., Bhattacharya S.K. Aqueous humor dynamics:
a review. Open Ophthalmol. J. 2010; 4: 52-59.
4. Nakao
S.,
Hafezi-Moghadam
Lymphangiogenesis
in
the
A.,
Eye.
J.
Ishibashi
T.
Ophthalmol.
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3317234/
Lymphatics
2012;
Avaible
(Accessed
5
and
at:
Mar
2011).
5. Bill А. Blood circulation and fluid dynamics in the eye. Physiological Reviews.
1975; 55 (3): 383–417.
6. Alm. A. , Nilsson S.F. Uveoscleral outflow-a review. Exp Eye Res. 2009; 88
(4):760-768.
7. Birke K., Lütjen-Drecoll E., Kerjaschki D., Birke M.T. Expression of Podoplanin
and Other Lymphatic Markers in the Human Anterior Eye Segment. Invest.
Ophthalmol. Vis. Sci. 2010; 51(1): 344-354.
8. Yücel Y.H., Johnston M.G., Ly T., Patel M., Drake B., Gümüş E.et al.
Identification of lymphatics in the ciliary body of the human eye: a novel
"uveolymphatic" outflow pathway. Exp. Eye. Res. 2009; 89(5): 810-809.
9. Fёldi M. The brain and the lymphatic system revisited. Lymphology. 1999;
32(2): 40-44.
12
10. Коненков В.И., Бородин Ю.И., Бгатова Н.П. Молекулярные маркеры
лимфатических и кровеносных сосудов при развитии опухоли и мишени
блокирования метастазов. Вопросы онкологии. 2011; 57 (3): 295-301.
11. Moustou A.E., Alexandrou P., Stratigos A.J., Giannopoulou I., Vergou T,
Katsambas A. et al. Expression of lymphatic markers and lymphatic growth
factors in psoriasis before and after anti-TNF treatment. An Bras Dermatol.
2014; 89 (6): 891-897.
12. Platonova N., Miquel G., Regenfuss B., Taouji S., Cursiefen C., Chevet E. et al.
Evidence for the interaction of fibroblast growth factor-2 with the lymphatic
endothelial cell marker LYVE-1. Blood. 2013; 121 (7): 1229-1237.
13. Pula B., Wojnar A., Witkiewicz W.,Dziegiel P., Podhorska-Okolow M.
Podoplanin expression in cancer-associated fibroblasts correlates with VEGF-C
expression in cancer cells of invasive ductal breast carcinoma. Neoplasma. 2013;
60 (5): 516-524.
14. Бородин Ю.И. Лимфатический регион и регионарная лимфодетоксикация.
Хирургия. Морфология. Лимфология. 2004; 1(2): 5-6.
References
1.
Paniagua D., Jiménez L., Romero C., Vergara I., Calderón A., Benard M. et al.
Lymphatic route of transport and pharmacokinetics of micrurus fulvius (coral snake)
venom in sheep. Lymphology. 2012; 45 (4): 144-153.
2.
Kim M., Johnston M.G., Gupta N., Moore S., Yücel Y.H. A model to measure
lymphatic drainage from the eye. Exp. Eye Res. 2011; 93(5): 586-591.
13
3.
Goel M., Picciani R.G., Lee R.K., Bhattacharya S.K. Aqueous humor dynamics:
a review. Open Ophthalmol. J. 2010; 4: 52-59.
4.
Nakao
S.,
Lymphangiogenesis
Hafezi-Moghadam
in
the
Eye.
A.,
J.
Ishibashi
Ophthalmol.
T.
Lymphatics
2012;
Avaible
and
at:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3317234/ (Accessed 5 Mar 2011)
5.
Bill А. Blood circulation and fluid dynamics in the eye. Physiological Reviews.
1975; 55 (3): 383–417.
6.
Alm. A. , Nilsson S.F. Uveoscleral outflow-a review. Exp Eye Res. 2009; 88
(4):760-768.
7.
Birke K., Lütjen-Drecoll E., Kerjaschki D., Birke M.T. Expression of Podoplanin
and Other Lymphatic Markers in the Human Anterior Eye Segment. Invest.
Ophthalmol. Vis. Sci. 2010; 51(1): 344-354.
8.
Yücel Y.H., Johnston M.G., Ly T., Patel M., Drake B., Gümüş E. et al.
Identification of lymphatics in the ciliary body of the human eye: a novel
"uveolymphatic" outflow pathway. Exp. Eye. Res. 2009; 89(5): 810-809.
9.
Fёldi M. The brain and the lymphatic system revisited. Lymphology. 1999;
32(2): 40-44.
10.
Konenkov V.I., Borodin Ju.I., Bgatova N.P. Molecular markers of lymphatic and
blood vessels in tumor development and target for metastasis blocking. Voprosy
onkologii. 2011; 57 (3): 295-301. (In Russian).
11.
Moustou A.E., Alexandrou P., Stratigos A.J., Giannopoulou I., Vergou T,
Katsambas A. et al. Expression of lymphatic markers and lymphatic growth factors in
psoriasis before and after anti-TNF treatment. An Bras Dermatol. 2014; 89 (6): 891897.
14
12.
Platonova N., Miquel G., Regenfuss B., Taouji S., Cursiefen C., Chevet E. et al.
Evidence for the interaction of fibroblast growth factor-2 with the lymphatic endothelial
cell marker LYVE-1. Blood. 2013; 121 (7): 1229-1237.
13.
Pula B., Wojnar A., Witkiewicz W.,Dziegiel P., Podhorska-Okolow M.
Podoplanin expression in cancer-associated fibroblasts correlates with VEGF-C
expression in cancer cells of invasive ductal breast carcinoma. Neoplasma. 2013; 60 (5):
516-524.
14.
Borodin Yu.I. Lymphatic region and Regional limphodetoxication. Khirurgiya.
Morfologiya. Limfologiya. 2004; 1(2): 5-6. (In Russian).
15
А
Б
В
Г
Д
Е
Рис. 1. Структура интерстициальных пространств в передней камере глаза.
А - Направленность соединительнотканных волокон, фибробластов и их отростков вдоль
гладкомышечных волокон в цилиарном теле. Окрашивание на маркер к рецептору фактора роста
фибробластов. Увеличение 10х10.
Б - Межтканевые щели в цилирном теле, ограниченные коллагеновыми фибриллами и
фибробластами. Увеличение х8000.
В – Интерстициальные пространства в радужной оболочке глаза. Окрашивание на маркер к
рецептору фактора роста фибробластов. Увеличение 10х40.
Г - Наличие коллагеновых фибрилл и фибробластов в перикапиллярном пространстве радужной
оболочки. Увеличение х10000.
Д - Межтканевые щели в структуре роговицы. Увеличение х15000.
Е - Межтканевые щели в склере, ограниченные коллагеновыми фибриллами и фибробластами.
Увеличение х15000.
16
А
В
Б
Г
Рис. 2. Сосуды цилиарного тела глаза человека.
А - Prox-1+ -лимфатические сосуды вдоль мышечных волокон цилиарного тела.
Увеличение 10х40.
Б - лимфатический капилляр, прилежащий к мышечным волокнам цилиарного
тела. Увеличение х8000.
В – кровеносные сосуды у основания цилиарных отростков. Окраска
гематоксилином и эозином. Увеличение 10х10.
Г - CD31+ - кровеносные сосуды в цилиарном теле. Увеличение 10х10.
17