ВОПРОСЫ ЛЕСНОЙ ФИТОПАТОЛОГИИ ВЫБОР СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД, ПРИГОДНЫХ ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ ПОРАЖЕНИЯ ХВОЙНЫХ ПОРОД ГРИБОМ DIPLODIA PINEA Р.А. УМАНОВ, асп. каф. экологии и защиты леса МГУЛ Л етом 2008 г. было обнаружено усыхание сосны обыкновенной в посадках частных владений ближнего Подмосковья. Было установлено, что причиной усыхания сосны является диплодиевый некроз, или диплодиоз, вызываемый грибом Diplodia pinea=Sphaeropsis sapinea. Этот гриб, конечно, был известен на территории бывшего СССР, но встречался преимущественно в южных республиках (Казахстане, Грузии, Украине), где был обнаружен в 1926 г.[3]. Сравнительно недавно, в 2002 г., этот гриб был обнаружен в Московской области Соколовой Э. С. в питомниках и городских посадках на кедровой, горной и черной сосне. Из литературы известно, что Diplodia pinea является оппортунистической инфекцией, т. е. болезнь развивается на растениях, ослабленных различными неблагоприятными естественными и антропогенными факторами: повреждение насекомыми, солнечно-морозный ожог, дефицит влаги, засуха, чрезмерное затенение, уплотнение почвы и т. д. [4, 5, 6, 9]. Также известно, что болезнь в 70 % случаев протекает в скрытой форме. Это может способствовать распространению диплодиоза в России и осложняет диагностику этого заболевания. Для облегчения диагностики заболевания диплодиозом разных видов сосны, автором был проведен ряд экспериментов с целью выявления оптимального состава синтетической стерильной среды для получения плодоношений этого гриба. Ранее подобные работы проводились и в СССР [1] и за рубежом [8]. Так, О. Г. Кизикелашвили установил, что для прорастания спор и развития гриба необходима температура в интервале от +12° C до +36° C, оптимальной является температура +25° С. Также, экспериментируя с разнообразными стерильными агаровыми средами, он уста- 118 caf-ecology@mgul.ac.ru новил, что мицелий этого гриба лучше всего развивается на картофельно-глюкозном агаре (КГА), но плодоношений гриба отмечено не было. Однако О. Г. Кизикелашвили сообщил, что на среде Чапека с добавлением NH4NO3 или избытком NaNO3 возможно получение плодовых тел гриба. Вместе с этим зарубежные исследователи отмечают, что мицелий Diplodia pinea успешно развивается на любой среде, содержащей крахмал и глюкозу [8], но плодовых тел не образуется. И зарубежные исследователи и О. Г. Кизикелашвили успешно получали плодоношения гриба на стерильной молодой хвое сосны и стеблях донника [1, 7]. Но такие среды не всегда доступны. Для эксперимента использовались следующие среды: среда Чапека, среда Чапека с избытком NaNO3 (избыток 2 %), среда Чапека с добавлением NH4NO3 (2 %), среда Чапека с добавлением маточного раствора витаминов и органических веществ среды МурасигеСкуга, а также витамина А и С (далее среда ЧМС), агаризованное пивное сусло, картофельно-глюкозный агар и черносливовый агар [2]. Посевы проводились методом моноспоровых культур [2] в чашки Петри диаметром 9 см, в которые наливалось по 20 мл среды. Для каждой среды использовалось по 10 чашек Петри. Культивирование гриба происходило при температуре 24° С и постоянной относительной влажности воздуха 86 %. Наблюдение за ходом роста гриба проводились на 3, 7, 15, 20, 27, 35-й день после посева. При этом измерялся диаметр колоний, отмечалось возрастное потемнение мицелия и наличие плодоношений. Результаты измерений указаны в таблице. Как видно из таблицы, самая высокая скорость роста мицелия гриба была на ЛЕСНОЙ ВЕСТНИК 4/2011 ВОПРОСЫ ЛЕСНОЙ ФИТОПАТОЛОГИИ Рис. 1. Пикнида Diplodia pinea, полученная на среде ЧМС. Микросъемка с 135-кратным увеличением Рис. 2. Конидии Diplodia pinea, полученные на среде ЧМС. Микросъемка с 600-кратным увеличением ЛЕСНОЙ ВЕСТНИК 4/2011 119 ВОПРОСЫ ЛЕСНОЙ ФИТОПАТОЛОГИИ Таблица Скорость развития мицелия гриба Diplodia pinea на различных стерильных средах Среда, используемая для выращивания Картофельно-глюкозный агар Черносливовый агар Среда Чапека Среда Чапека с избытком NaNO3 Среда Чапека с добавлением NH4NO3 Среда ЧМС Агаризованное пивное сусло Диаметр ко- Диаметр ко- Диаметр ко- Диаметр ко- Диаметр ко- Диаметр колоний на 3-й лоний на 7-й лоний на 15-й лоний на 20-й лоний на 27-й лоний на 35-й день после день после день после день после день после день после посева, см посева, см посева, см посева, см посева, см посева, см 3,4 9 9 9 9 9 5,5 2,8 9 7 9 9 9 9 9 9 9 9 3,4 6,5 9 9 9 9 2,5 5,3 8 9 9 9 2,5 6,2 7,8 9 9 9 3 9 9 9 9 9 черносливовом агаре, на КГА скорость роста чуть ниже. Самой низкой скорость роста была на среде Чапека с добавлением NaNO3. Возрастное потемнение мицелия раньше всех было отмечено на КГА (5-й день), на агаризованном пивном сусле потемнение мицелия было отмечено на 7-й день, на среде Чапека потемнение было отмечено на 10-й день, на среде Чапека с избытком NaNO3 потемнение было отмечено на 7-й день, на среде ЧМС и среде Чапека с добавлением NH4NO3 возрастного потемнения мицелия отмечено не было, на черносливовом агаре оно было отмечено на 15-й день. Плодоношений гриба ни на одной из сред, кроме ЧМС, не было отмечено. Первые плодоношения на ЧМС были обнаружены на 32-ой день после посева (рис. 1, 2.). Плодоношения были найдены в 9 из 10 чашек. Пикниды имеют размер около 200×230 µ в ширину, конидии коричневые и имеют размер 32×12 µ. Однако количество плодоношений сильно варьирует. Из всего сказанного можно сделать вывод, что среда Чапека с добавлением маточного раствора витаминов и органических веществ среды Мурасиге-Скуга, а также витамина А и С дает лучшие результаты по сравнению с другими средами использованными в этом опыте. 120 Библиографический список 1. Кизикелашвили, О.Г. Результаты изучения диплодиоза пицундской сосны в Грузии: автореф. дис. ... канд. биол. наук / О.Г. Кизикелашвили. – Тбилиси: Мецниереба 1971. – 25 с. 2. Самуцевич, М.М. Техника фитопатологических исследований / М.М. Самуцевич. – М.: Государственное издательство сельскохозяйственной и колхознокооперативной литературы, 1931. – 99 с. 3. Чернецкая, З.С. Материалы к изучению флоры грибов Северной Осетии / З.С. Чернецкая. – Владикавказ, 1929. – C. 93. 4. J. T. Blodgett, E. L. Kruger and G. R. Stanosz. Effects of Moderate Water Stress on Disease Development by Sphaeropsis sapinea on Red pine. – Phytopathology. 1997. Volume 87. №4. С. 428-433. 5. J. Flowers, E. Nuckles, J. Hartman, and L. Vaillancourt. Latent Infection of Austrian and Scots Pine tissues by Sphaeropsis sapinea. – Plant disease. 2001. Volume 85, №10. С. 1107-1112. 6. J. Hartman, G. Mussey and W. Fountain. Evolution of landscape Austrian pines for tip blight disease. – 1994.Untiv. Ky. Nursery Landsc. Program Res. Rep. SR-94-1:31. 7. T. H. Nicholls and M. E. Ostry. Sphaeropsis sapinea Cancers on Stressed Red and Jack Pines in Minnesota and Wisconsin. – Plant disease. 1990. Vol. 74, № 1. С. 54-56. 8. M. A. Palmer, T. H. Nicholls. How to identify and control Diplodia shot blight, collar rot, and canker of conifers. – North Central Research Station 1983. 9 с. 9. Wayne A. Sinclair and Howard H. Lyon. Diseases of trees and shrubs / Cornell University: New York 2005. 2-nd. ed. С. 130. ЛЕСНОЙ ВЕСТНИК 4/2011