ДИАГНОСТИКА ТРИХОФИТИИ ТЕЛЯТ В УСЛОВИЯХ КФХ «ИСЯНОВ АЙДАР

ДИАГНОСТИКА ТРИХОФИТИИ ТЕЛЯТ В УСЛОВИЯХ КФХ
«ИСЯНОВ АЙДАР»
Желнина Д. С.
Научный руководитель Ильясова З. З.
ФГБОУ ВО Башкирский ГАУ
Уфа, Россия
DIAGNOSIS TRIHOFITII CALVES UNDER FARM "ISANOV AYDAR"
Zhelnina D. S.
Research supervisor Ilyasova Z. Z.
Federal State Educational Institution of Higher Education Bashkir GAU
Ufa, Russia
Трихофития, известная как стригущий лишай — инфекционная болезнь,
характеризующаяся появлением на коже животных резко ограниченных, овальной формы шелушащихся участков с обломанными у основания волосами или
развитие выраженного воспаления кожи с выделением серозно-гнойного экссудата и образованием корок. Трихофития характерна для всех видов сельскохозяйственных и домашних животных. Крупный рогатый скот более других видов
животных восприимчивы к данной болезни, в особенности телята поражаются с
2-х месяцев и до года. Основным возбудителем трихофитии являются грибы из
рода Trichophyton. Распространению возбудителя способствуют нарушения санитарно-гигиенических условий содержания и эксплуатации животных, появление на коже ссадин, царапин, ран, потертостей, мацерированных участков,
скученность животных, неполноценное кормление.
Целью наших исследований явилось – изучить возбудителя болезни и
провести лабораторную диагностику.
В задачи исследований входило:
1. Изучить микроскопию исследуемого материала.
2. Выделить культуру возбудителя.
3. Провести дифференциальную диагностику возбудителя.
Работа выполнялась в условиях КФХ «Исянов Айдар» деревня Надеждино Иглинского района республики Башкортостан и учебной лаборатории кафедры инфекционных болезней, зоогигиены и ветсанэкспертизы ФГБОУ ВО
Башкирский ГАУ. В производственных опытах было использовано 16 голов телят 4 – 6 месячного возраста.
Для диагностики заболевания проводили клинический осмотр животных
и взятие проб волос и корочек с периферии трихофитийных очагов, не подвергшихся лечебной обработке.
Для микроскопии исследуемых волос использовали световой микроскоп.
Для этого волосы, чешуйки, корочки помещали в стерильные чашки Петри, заливали 10-15% раствором гидроокиси натрия и выдерживали в течение 20-30
минут. Затем исследуемый материал помещали на предметное стекло в каплю
50% водного раствора глицерина, накрывали предметным стеклом и просматривали сначала под малым (х4 и х10), а затем на среднем увеличении микроскопа (х40). Наблюдали распавшиеся споры возбудителя округлой и овальной
формы в виде цепочек на пораженных волосах (рис. 1).
окуляр х 10, объектив х40
окуляр х 10, объектив х10
Рис. 1 Волосы, пораженные возбудителем трихофитии
Для выделения культуры возбудителя осуществляли посев на специальную питательную среду - агар Сабуро. Пораженные волоски помещали на агар
Сабуро в чашках Петри, которые термостатировали при температуре 25-28°С
10 дней. Через 10 дней на чашках Петри наблюдали характерный рост (рис. 2).
При микроскопии культуры возбудителя, обнаружили характерный мицелий и
споры грибов (рис. 3).
Рис. 2 Рост на агаре Сабуро
Рис. 3 Микроскопия культуры
Дифференциальную диагностику от микроспории проводили с помощью
люминесцентной лампы Вуда с лупой «Сапфир 2В» (рис. 4). Для этого просматривали пораженные волосы в чашке Петри через лампу Вуда, возбудитель
трихофитии не даёт свечения.
Рис. 4 Лампа Вуда
Таким образом, при дифференциальной диагностике и микроскопии пораженных волос и культуры возбудителя на агаре Сабуро, был выявлен возбудитель трихофитии телят Trichophyton verrucosum.