Гистология мочевого пузыря при синдроме недержания мочи у

ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
Выводы. Представленные результаты исследований свидетельствуют о положительном
влиянии олина на гуморальные и клеточные
факторы естественной резистентности телят
раннего возраста.
Т-лимфоцитов в крови телят II опытной группы.
Разница составила 8,33–20,69% (табл. 2).
Число В-лимфоцитов у телят I и II опытных
групп в возрасте 10 дней было больше, чем
у контрольных аналогов, на 28,57 (р<0,05) и
26,19% (р<0,05), в 20-дневном возрасте – на
39,18 (р<0,01) и 34,55% (р<0,05) и к концу наблюдений – 49,09 (р<0,01) и 47,27% (р<0,01).
Под действием пробиотика у молодняка крупного рогатого скота наблюдалось усиление клеточных факторов естественной резистентности.
Фагоцитарная активность нейтрофилов крови
у телят опытных групп превысила контрольные
уровни в 10-дневном возрасте на 13,19–13,71%
(р<0,01), 20-дневном – на 15,96–16,43% (р<0,001),
30-дневном – на 16,67–17,09% (р<0,05). В аналогичные периоды исследований фагоцитарный
индекс нейтрофилов увеличился на 21,68–23,08%
(р<0,01–0,001), 19,33–28,00% (р<0,01–0,001) и
18,93–19,53% (р<0,01–0,001) соответственно.
Литература
1. Антипов В.А. Использование пробиотиков в животноводстве // Ветеринария. 1994. № 4. С. 55–58.
2. Данилевская Н.В. Фармакологические аспекты применения
пробиотиков // Ветеринария. 2005. № 11. С. 6–10.
3. Нигматуллин А.И., Петрова Н.В., Титова В.Ю. и др. Применение энтероспорина в ветеринарии // Ветеринария.
2005. № 4. С. 13–16.
4. Стечний Б.Т., Гужвинская С.А. Перспективы использования
пробиотиков в животноводстве // Ветеринария. 2005. № 11.
С. 10–11.
5. Сидоров М.А., Субботин В.В., Данилевская Н.В. Нормальная
микрофлора животных и её коррекция пробиотиками //
Ветеринария. 2000. № 11. С. 17–22.
6. Спасская Т.А., Клименко Е.В. Пробиотики и биологически
активные вещества в практике животноводства // Доклады
Тимирязевской сельскохозяйственной академии. Вып. 273.
Часть 2. М., 2001. С. 46–50.
7. Тараканов Б.В. Механизмы действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных //
Ветеринария. 2000. № 1. С. 47–54.
Гистология мочевого пузыря при синдроме
недержания мочи у соболей
В. Е. Соболев, к.в.н., НИИ гигиены, профпатологии
и экологии человека; С. И. Жданов, аспирант, СанктПетербургская ГАВМ
ласти в соответствии с технологическим циклом
зверохозяйства в период убоя животных проведено патологоанатомическое вскрытие 76 голов
молодняка соболей (64 – самцы; 12 – самки) с
диагнозом синдром недержания мочи. При этом
признаки воспалительного процесса в мочевом
пузыре выявлены в 28,1% случаев у самцов и
в 41,6% случаев – у самок. В 26,5% случаев у
самцов и в 33,3% случаев у самок больных животных патологические изменения в мочевом
пузыре отсутствовали. Для гистологического
исследования отбирали по пять мочевых пузырей
от больных животных с признаками цистита,
без признаков цистита и от здоровых животных (всего 15 шт.). Мочевые пузыри животных
фиксировали в 10-процентном нейтральном
формалине или жидкости Карнуа. Гистологические срезы мочевого пузыря толщиной 5–7 мкм
получали на роторном микротоме Slee Cut 5062.
Срезы окрашивали гематоксилин – эозином,
альциановым синим и по методу Хейла для выявления мукополисахаридов. Гистологические
срезы изучали с помощью микроскопа Zeiss Axio
Observer A1, микрофотографии получали при
помощи устройства захвата изображения Pixera
Penguin 150 CL. Морфометрические измерения
в срезах мочевого пузыря проводили с помощью
программы «Видеотест-размер 5.0».
Статистическая обработка полученных данных выполнена в программе GraphPad Prizm 5.0
для Windows XP. Нормальность распределения
В настоящее время основной этиологический
фактор синдрома недержания мочи, поражающего молодняк норок и соболей (преимущественно самцов) и связанного с непроизвольным
мочеиспусканием и повреждением меха и кожи
животных в области живота, неизвестен. Ранее
используемые в отечественной и англоязычной литературе термины «подмокание» и «wet
belly» [1, 2] не отвечают современным требованиям ветеринарной нозологии, в которых
необходимо учитывать не только область патологического процесса, но и основные этиологические
или патогенетические факторы. В связи с этим
авторы предлагают новую терминологическую
единицу – «синдром недержания мочи» (СНМ) у
пушных зверей. Известны результаты зарубежных
исследований, посвящённых изучению влияния
зоогигиенических параметров, условий кормления
и содержания зверей, на развитие заболевания у
норок [3–8]. Однако практически отсутствуют
работы, посвящённые изучению морфологических
изменений в мочевом пузыре у больных животных. Целью настоящей работы является изучение
гистологической картины в мочевом пузыре у
соболей, больных синдромом недержания мочи.
Материалы и методы. В течение 2009–2011 гг.
в звероводческом хозяйстве Ленинградской об91
ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
выборки проверяли с помощью теста ШапироУилка. Полученные данные оценивали методами описательной статистики, с определением
средних значений и стандартного отклонения в
формате М±s. Статистическую значимость различий показателей сравниваемых групп определяли методом однофакторного дисперсионного
анализа (one way ANOVA). Для сравнения парных
выборок, не отвечающих критериям нормальности, использовали U-критерий Манна-Уитни.
Различия сравниваемых показателей считали
статистически значимыми при уровне р<0,05.
Результаты и обсуждение. Для сравнительного
анализа гистологических изменений в мочевом
пузыре были сформированы три группы животных, от которых отбирали секционный материал.
У зверей I гр. (контрольной) клинические признаки заболевания и патологические изменения
в мочевом пузыре отсутствовали. Во II и III гр.
включили соболей с клиническими признаками
недержания мочи и воспалительного процесса
в мочевом пузыре соответственно. У соболей II
гр. при патологоанатомическом вскрытии диагностировали катаральный цистит. Материал от
животных III гр. – мочевые пузыри с признаками
очагового геморрагического цистита (рис. 1).
Рис. 1 – Геморрагический цистит:
1 – мочевой пузырь;
2 – геморрагический участок
В отличие от здоровых животных, мочевые
пузыри соболей II и III гр. содержали большее
количество остаточной мочи. У животных III гр.
наблюдались признаки устойчивой дилатации
мочевого пузыря (рис. 1).
При изучении гистологических срезов мочевого пузыря у больных животных III гр. выявлено
наличие геморрагических участков с дегенеративными изменениями структуры соединительной ткани подслизистой основы и мышечных
волокон в мышечной оболочке органа. При окрашивании срезов методом Хейла и альциановым
синим отмечается интенсивное окрашивание
собственной пластинки слизистой оболочки
(рис. 2). Этот факт, вероятно, указывает на накопление гликозаминогликанов, защищающих, как
известно, слизистую оболочку мочевого пузыря
от воздействия повреждающих факторов [9].
Методами количественной морфометрии у
здоровых и больных животных выявлены статистически значимые отличия по ряду линейных
и объёмных характеристик тканей и клеток в
срезах мочевого пузыря. Результаты представлены в таблице.
Из данных таблицы можно увидеть некоторые
закономерности в сравниваемых показателях.
Рис. 2 – Мочевой пузырь соболя, группа III. Геморрагический
цистит Х 10; окраска по методу Хейла:
1 – слизистая оболочка; 2 – геморрагические участки
Результаты количественной морфометрии мочевого пузыря соболей
Группы животных
I
II
гистометрические
Толщина слизистой, мкм:
130,7±33,4
47,9±6,2**
Толщина собственной пластинки, мкм:
71,0± 6,9
123,3± 24,6**
Толщина подслизистой основы, мкм:
141,9± 19,1
84,3± 9,1*
Толщина мышечной оболочки, мкм:
1276± 340,3
834,9± 101,2*
цитометрические
Площадь эпителиоцита, мкм2:
252,1± 110,6
601,9± 165,0**
Объём ядра эпителиоцита, мкм3:
719,8±468,7
909,1±520,0
Объём эпителиоцита, мкм3:
2098±1514
9763±3734**
ЯЦО
0,61±0,15
0,87±0,07**
Примечания: ЯЦО – ядерно-цитоплазматическое отношение; * – р<0,05; ** – р<0,01
Показатели
92
III
48,7±7,2**
55,0± 5,9*
53,78± 7,2**
340,3± 50,2**
677,9± 173,1**
2297±1076**
11526±4661**
0,72±0,09
ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
Рис. 3 – Срез стенки мочевого пузыря соболя, группа III Х10;
альциановый синий:
Рис. 4 – Срез стенки мочевого пузыря соболя, группа I Х10;
альциановый синий:
1 – слизистая оболочка; 2 – собственная пластинка
слизистой оболочки; 3 – продольный слой мышечной
оболочки
1 – слизистая оболочка; 2 – собственная пластинка;
3 – подслизистая основа; 4 – мышечная оболочка
Так, у животных II и III гр. слизистая оболочка и подслизистая основа, представленная
элементами рыхлой соединительной ткани,
значительно тоньше, чем в контрольной группе.
Истончение слизистой оболочки объясняется
усилением эксфолиации эпителиоцитов под
влиянием воспалительного процесса в мочевом
пузыре. У животных II гр. наблюдается утолщение и отёк собственной пластинки слизистой
оболочки, характерные для катарального воспалительного процесса. Уменьшение толщины
мышечной оболочки мочевого пузыря у соболей
II и III гр. отражает состояние функциональной
неполноценности мочевого пузыря, в частности
его атонию и последующую дилатацию. На
рисунке видно растяжение мышечных волокон
продольного слоя мышечной оболочки по сравнению с мочевым пузырём здоровых животных
(рис. 4). Значительный объём остаточной мочи в
мочевом пузыре у животных II и III гр. является
вероятным резервуаром для развития инфекции
и повреждения слизистой оболочки.
Цитометрические и кариометрические показатели эпителиоцитов мочевого пузыря соболей II и III гр. отличаются от показателей
контрольной группы с высоким уровнем статистической значимости. Клетки эпителия у
больных животных имеют большую площадь и
объём. Ядерно-цитоплазматическое отношение
клеток эпителия мочевого пузыря, представляющее собой объёмную долю цитоплазмы в
эпителиальных клетках, существенно выше
в эпителиоцитах соболей II гр. Увеличение
ЯЦО в эпителиоцитах соболей II гр. косвенно
свидетельствует о повреждении эпителиальных
клеток, в то время как у животных III гр. этот
показатель отличается от группы сравнения незначительно. Это различие, по-видимому, объясняется воздействием повреждающих факторов.
Если у животных II гр. развитие катарального
воспалительного процесса связано с повреждением слизистой оболочки, то у соболей III гр.
очаговый геморрагический цистит связан с повреждением подслизистой основы и мышечного
слоя мочевого пузыря, которые, как известно,
хорошо снабжены системой кровеносных сосудов. Нарушение проницаемости сосудистой
стенки является в данном случае одним из
звеньев патогенеза геморрагического циститы.
Выводы. В результате проведённых исследований впервые получена информация о гистологических изменениях в тканях мочевого пузыря
соболей, больных синдромом недержания мочи.
В проведённых нами исследованиях у 28,1%
самцов и 41,6% самок выявлен катаральный или
геморрагический цистит.
В зарубежных публикациях, посвящённых
гистологии мочевого пузыря у норок, больных
wet belly, информация о воспалительном процессе
в мочевом пузыре отсутствует [10, 11].
С помощью методов гистохимического исследования выявлены признаки накопления
гликозаминогликанов в собственной пластинке
мочевого пузыря у больных животных. В настоящее время клинически доказана защитная
роль гликозаминогликанов, присутствующих в
слизистой оболочке мочевого пузыря [5]. Для
доказательства повышения содержания кислых
мукополисахаридов в слизистой оболочке мочевого пузыря у больных синдромом недержания
мочи зверей требуется проведение дальнейших
исследований с использованием методов биохимического определения содержания этих
соединений в крови и моче.
Методами количественной морфометрии
выявлены статистически значимые отличия в
морфологии мочевого пузыря соболей, больных
синдромом недержания мочи. Основными отличиями являются уменьшение толщины слизистой
оболочки, подслизистой основы и мышечной
93
ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
оболочки у больных животных, что может быть
обусловлено повышением уровня эксфолиации
эпителиальных клеток и явлениями атонии и
дилатации мочевого пузыря больных животных.
Таким образом, полученные результаты исследований подтверждают гипотезу о наличии
воспалительного процесса в мочевом пузыре
у животных, больных синдромом недержания
мочи.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
Литература
1. Данилевский В.М., Забалуев Г.И. Словарь ветеринарных
терапевтических терминов. М.: Росагропромиздат, 1989.
С. 88.
2. Saunders comprehensive veterinary dictionary – 2nd ed. / Blood
D.C; Studdert K.P.: WB Saunders, 1999. P. 1226.
3. Aulerich R., Shelts G., Schaibie P.J. Influence of the dietary
calcium level on the incidence of urinary incontinence and «wet
10.
11.
belly» in mink // Michigan Quarterly bull., 1963. Vol. 45. № 3.
P. 444–449.
Aulerich R., Ringer R.K., Schaibie P.J. Mink pelts affected with
«wet belly» // Michigan Quarterly bull. 1962. Vol. 44. № 3.
P. 484–491.
Aulerich R., Schaibie P.J. The use of spent chickens for
mink feeding // Michigan Quarterly bull. 1965. Vol. 47. № 3.
P. 451–458.
Experiments in Mink nutrition: progress report 1963/Agricult.
Exp. St. Oregon St. University, 1964. 32 p.
Nutrient Requirements of Mink and Foxes – 2nd ed., 1982. P.19.
Mink research: progress report 1970/ Agricult. Exp. St. Oregon
St. University, 1972. 34 p.
Bhavanandan V.P. Glycosaminoglycans and Glycoproteins of
Animal Bladder. // Journal Connect Tissue 2001. Vol. 33.
№ 3. P. 245–252.
Bostrom R.E., Aulerich R.J., Schaibie P.J. Hystologic observation
on the urinary system of male mink affected with «wet belly» //
Michigan Quaterly bull. 1967. Vol. 50. № 1. P. 100–105.
Bostrom R.E., Aulerich R.J., Schaibie P.J. Hystologic features of
inguinal skin of «wet belly» and normal mink (Mustella vision)
// Am. J Vet. Res. 1967. Vol. 28. № 126. P. 1549–1554.
Возрастные морфологические особенности
языка кошки домашней
К.В. Садчикова, аспирантка, Оренбургский ГАУ
слизистой оболочкой, которая, переходя на
слизистую оболочку дна ротовой полости, образует уздечку.
На языке различают следующие отделы: верхушку, тело и корень (рис. 1).
Возрастные изменения параметра ширины
различных отделов языка в постнатальном онтогенезе у кошек имеют ряд особенностей (рис. 2).
Анализ полученных морфометрических данных показал, что тело является самым широким
отделом языка на протяжении всей жизни животного. Второй по ширине является верхушка,
а затем корень языка.
Увеличение всех отделов языка в ширину
происходит до периода расцвета функциональной деятельности, при этом максимальный рост
отмечается до двухмесячного возраста. Период
инволюционной атрофии характеризуется незначительным снижением показателя ширины
верхушки, тела и корня языка кошки домашней.
Сравнительный анализ показал, что по длине
верхушка языка превосходит остальные отделы языка (рис. 3). Длина в изучаемых отделах
языка увеличивается пропорционально возрасту
животных до периода расцвета функциональной
деятельности. Более интенсивный рост языка в
длину приходится на период половой зрелости.
У животных периода инволюционной атрофии
отмечается уменьшение показателя длины всех
отделов языка и соответственно языка в целом.
На дорсальной поверхности языка располагаются нитевидные, грибовидные, листочковидные, конические и валиковидные сосочки
(рис. 4). В зависимости от функции они делятся
на механосенсорные (механические) и хемосенсорные (вкусовые) [4].
Кошка – один из распространённых домашних питомцев. В связи с этим ветеринарные врачи
должны в полной мере владеть знаниями по
анатомии и физиологии, чтобы как можно лучше
разбираться в вопросах этологии, этиологии,
патогенеза различных нарушений у животных
этого вида. Это обеспечит эффективное лечение
и профилактику заболеваний у кошек. Анализ
литературных данных показывает, что орган
вкуса у кошек в возрастном аспекте не изучен.
Работы, касающиеся этой проблемы, освещают
данные о морфологических особенностях языка
животных других видов и человека [1–3, 5, 6].
Вследствие этого была поставлена цель – установить морфологические особенности языка
кошки домашней в возрастном аспекте.
Материалы и методы. Объектом исследования
служили головы кошек. Животных классифицировали на шесть возрастных групп: новорождённые (до двух (четырёх) недель); молочного
периода (1,5–2 мес.); периода половой зрелости
(5–9 мес.); периода физиологической зрелости
(10–18 мес.); периода расцвета функциональной
деятельности (2–5 лет); периода инволюционной
атрофии (более 7 лет). Экспериментальный материал брали из ветеринарных клиник г. Оренбурга.
Учёт морфометрических показателей проводили
с помощью штангенциркуля, микроскопа МБС-9
с разрешающей способностью до 0,01 мм.
Результаты исследований. Язык кошки располагается на дне ротовой полости и удерживается
с помощью подъязычной кости. При смыкании
челюстей заполняет собственно полость рта и
принимает её форму. Его поверхность покрыта
94